Agronomía Mesoamericana

Nota técnica

Volumen 37: Artículo a7qk0y46, 2026

e-ISSN 2215-3608, https://doi.org/10.15517/a7qk0y46

Caracterización de los síntomas de Thanatephorus sp. en el cultivo de papa (Solanum tuberosum)*

Characterization of the symptoms of Thanatephorus sp. in potato (Solanum tuberosum)

María Cecilia Aguilar-Zamora1, Carlos Sánchez Romero2, Francisco Brenes Brenes2, Eduardo Granados Brenes1

* Recepción: 22 de julio, 2025. Aceptación: 8 de abril, 2026. Este trabajo formó parte de un proyecto de investigación realizado por el Laboratorio de Fitopatología de la Universidad de Costa Rica, Sede del Atlántico, Turrialba.

1 Universidad de Costa Rica, Sede del Atlántico, Laboratorio de Fitopatología. Turrialba, Costa Rica. maria.aguilarzamora@ucr.ac.cr (https://orcid.org/0009-0008-1156-5759); eduardo.granados@ucr.ac.cr (autor para correspondencia; https://orcid.org/0009-0000-7843-3496).

2 Universidad de Costa Rica, Sede del Atlántico. Turrialba, Costa Rica. carlos.sanchezromero@ucr.ac.cr (https://orcid.org/0000-0003-4286-6585); fbrenesb@gmail.com (https://orcid.org/0009-0004-5903-0738).

Resumen

Introducción. Thanatephorus sp. es un basidiomiceto, con una alta variabilidad genética y un amplio rango de hospederos, que puede formar estructuras de resistencia. Objetivo. Caracterizar la sintomatología causada por el fitopatógeno Thanatephorus sp. en el cultivo de papa (Solanum tuberosum). Materiales y métodos. El estudio se realizó durante el periodo de junio a diciembre de 2023, en el Laboratorio de Fitopatología de la Universidad de Costa Rica, Sede del Atlántico, Turrialba, Costa Rica. Se aislaron órganos vegetativos y reproductivos de plantas de papa que presentaban síntomas de Thanatephorus sp. Los aislamientos se purificaron y el fitopatógeno se cultivó en medio artificial. Se purificó el hongo y se realizó la inoculación en el suelo y por técnica de aspersión en plantas de papa para observar la sintomatología de la enfermedad. Se evaluaron hojas, tallos y partes de la planta que presentaban alguna lesión anormal a su crecimiento. Resultados. Thanatephorus sp. se obtuvo principalmente del follaje de la planta de papa; creció y se desarrolló de manera in vitro en medio de cultivo PDA (agar papa dextrosa). Presentó morfología ramificada en forma de basidiomiceto y formó estructuras de reproducción sexual, basidiósporas. Se fusionaron hifas (anastomosis), lo que generó mayor variabilidad genética del patógeno. La sintomatología inició con lesiones necróticas puntuadas en la lámina foliar, con formación de halos cloróticos; estas se fusionaron hasta producir la muerte total del tejido foliar. Las lesiones se presentaron en diferentes órganos de la planta. Se observaron estructuras de resistencia (esclerocios) producidas por Thanatephorus sp. Conclusiones. El fitopatógeno Thanatephorus sp. causa daños en hojas, tallos y tubérculos, y forma estructuras de resistencia, lo cual facilita su diseminación. Su sintomatología puede ser confundida con la de otros fitopatógenos.

Palabras clave: Basidiomycota, Rhizoctonia solani, esclerocios, anastomosis.

Abstract

Introduction. Thanatephorus sp. is a basidiomycete, with high genetic variability and a broad host range, capable of forming survival structures. Objective. To characterize the symptomatology caused by the phytopathogen Thanatephorus sp. in potato (Solanum tuberosum) crops. Materials and methods. The study was conducted from June to December 2023 at the Plant Pathology Laboratory of the Universidad de Costa Rica, Sede del Atlántico, Turrialba, Costa Rica. Vegetative and reproductive plant tissues were collected from potato plants showing symptoms associated with Thanatephorus sp. The isolates were purified, and the pathogen was cultured on artificial media. The fungus was further purified and inoculated into soil, and applied via foliar spraying to potato plants in order to observe disease symptom development. Leaves, stems, and other plant parts exhibiting abnormal lesions were evaluated. Results. Thanatephorus sp. was primarily isolated from the foliage of potato plants and successfully grew in vitro on PDA (potato dextrose agar). The fungus exhibited branched morphology consistent with basidiomycetes and formed sexual reproductive structures, including basidiospores. Hyphal fusion (anastomosis) was observed, contributing to increased genetic variability of the pathogen. Symptom development began with small necrotic lesions on the leaf blade, surrounded by chlorotic halos; these lesions coalesced, leading to complete foliar tissue necrosis. Lesions were also observed on different plant organs. Survival structures (sclerotia) produced by Thanatephorus sp. were identified. Conclusions. The phytopathogen Thanatephorus sp. causes damage to leaves, stems, and tubers, and produces survival structures that facilitate its dissemination. Its symptomatology may be confused with that of other phytopathogens.

Keywords: Basidiomycota, Rhizoctonia solani, sclerotia, anastomosis.

Introducción

El cultivo de papa (Solanum tuberosum) es considerado el cuarto cultivo de mayor importancia a nivel mundial después del arroz, el maíz y el trigo. A nivel centroamericano, para el año 2020 el área sembrada del cultivo fue de 22 000 ha, principalmente para el consumo local (Bayer, s. f.). En Costa Rica, para 2015, un 29,6 % del territorio de la provincia de Cartago estaba sembrado de papa, seguido del cantón de Zarcero con un 19,6 % (Barboza-Navarro et al., 2021; Vignola et al., 2017).

Cartago representa un 74 % de la producción de papa nacional, con un área de 2018 ha destinadas al cultivo, en los cantones de Oreamuno, Turrialba y Alvarado. Los rendimientos más altos se reportan en Turrialba y Alvarado con 2,63 kg/m2, mientras que en otras localidades oscilan entre los 2,09 y 2,54 kg/m2. La producción nacional total ha tenido un declive de 0,54 kg/m2/año entre el periodo de 2019 a 2022. Esta baja en los rendimientos se asocia a factores económicos, ambientales y fitosanitarios (Caravaca Vega, 2023).

En la provincia de Cartago, a partir del año 2018 se observó un problema fitosanitario, reportado como un “complejo hongo-bacteria”, llamado así por los agricultores, sin conocer el agente causal. Se describieron daños en la parte aérea de la planta, a lo que llamaron “viruela de la papa”, caracterizados por lesiones necróticas puntuadas de coloración café, dispersas en toda la lámina foliar. Sin embargo, la limitada información disponible y el escaso conocimiento del patógeno impidieron un control fitosanitario efectivo, lo cual favoreció su proliferación y aumentó los daños en el cultivo.

A partir de esta información y el aumento de la severidad del problema observado en las plantaciones de papa en la zona norte de Cartago, en el Laboratorio de Fitopatología de la Universidad de Costa Rica, Sede del Atlántico, Turrialba, se aislaron fragmentos de tejido enfermo provenientes de plantas de la variedad Floresta. Los aislamientos permitieron obtener una primera evidencia de un posible agente asociado a las lesiones observadas, preliminarmente identificado como Thanatephorus sp. (M. C. Aguilar, comunicación personal, 2022). Con base en estos resultados, se iniciaron estudios orientados a caracterizar el organismo involucrado y su posible relación con la sintomatología presente en el cultivo de papa.

El organismo aislado se ubicó dentro del complejo de especies del grupo Rhizoctonia. No obstante, Thanatephorus corresponde al estado teleomorfo de algunas especies de este grupo y presenta características propias de basidiomicetos, incluyendo hifas septadas, lo cual difiere de la morfología típicamente observada en los aislamientos anamórficos de Rhizoctonia sp. Por ello, la asignación taxonómica se considera preliminar y basada en rasgos morfológicos, por lo que se requieren análisis adicionales para confirmar de manera concluyente el agente etiológico (Taylor & McCormick, 2008).

El fitopatógeno Thanatephorus sp. es complejo de estudiar debido a su morfología; se le considera como una mezcla compleja de hongos filamentosos (González García et al., 2006), de hábito patógeno, polífago, necrotrófico y saprófago (Rioux et al., 2011). Sobrevive en el suelo por la formación de estructuras de resistencia (esclerocios), lo que permite periodos de latencia largos hasta encontrar un hospedero alternativo (Wang et al., 2026).

Thanatephorus sp. es la fase anamorfa de Rhizoctonia solani, el cual tiene una gran variabilidad genética, presenta gran capacidad de sobrevivencia y un amplio espectro de hospederos (Lima et al., 2017). Entre los más comunes se encuentra la familia Fabaceae, como frijol (Phaseolus vulgaris), caupí (Vigna unguiculata) y okra (Abelmoschus esculentus) (Gasparotto et al., 2017). También afecta la familia de las poáceas (Chavarro-Mesa et al., 2020), especies de orquídeas, eucalipto (Warcup, 1991) y algunos cultivos de interés de la zona como remolacha (Beta vulgaris), fresa (Fragaria × ananassa), lechuga (Lactuca sativa), tomate (Solanum lycopersicum), cebolla (Allium cepa), especies de la familia de las brásicas, zanahoria (Daucus carota) y chile (Capsicum spp.) (Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural & Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria, s. f.).

Sin embargo, se ha observado que Thanatephorus sp. puede ingresar en tejidos vegetales a través de aperturas naturales o en material vegetativo sano sin daños mecánicos. En crucíferas y solanáceas, penetra la cutícula de los tallos en etapas de plántulas y muestra especificidad hacia estos cultivos, ya que no actúa de la misma manera en otras familias de plantas (Flentje et al., 1963). Sin embargo, su mecanismo de ingreso en el cultivo de papa ha sido poco estudiado. Ante este vacío de información, el objetivo de esta investigación fue caracterizar la sintomatología causada por el fitopatógeno Thanatephorus sp. en el cultivo de papa (Solanum tuberosum).

Materiales y métodos

El experimento se llevó a cabo en el Laboratorio de Fitopatología y los invernaderos de la Universidad de Costa Rica, Sede del Atlántico, Turrialba de agosto a octubre de 2023. Se tomaron muestras del tejido vegetal de plantas de papa de la variedad Floresta con síntomas de la enfermedad como necrosis puntuada en hojas del cultivo, provenientes de la Estación Experimental Dr. Carlos Durán del Instituto Nacional de Innovación y Transferencia en Tecnología Agropecuaria (INTA), ubicada en Oreamuno, Cartago, Costa Rica.

Las muestras fueron llevadas a la Universidad de Costa Rica, Sede del Atlántico, Turrialba, localizada a 613 m s. n. m. Esta zona se clasifica como bosque muy húmedo premontano tropical, según el diagrama de zonas de vida de Holdridge (Abarca, 2008). Presenta rangos de temperaturas promedio entre 17 y 28 °C, radiación solar de 9 a 12 MJ/m2, humedad relativa entre 60 y 100 % y precipitaciones mensuales entre 28 y 50 mm (Instituto Meteorológico Nacional, s. f.).

Aislamiento y purificación del patógeno

Los aislamientos se realizaron a partir de tejidos de plantas de papa (Solanum tuberosum) con lesiones necróticas activas en diferentes órganos, incluyendo raíces, tallos, hojas, tubérculos y flores. En raíces y tallos se observaron lesiones pardas hundidas; en hojas, manchas necróticas irregulares con clorosis marginal; en tubérculos, necrosis cortical asociada a áreas deprimidas; y en flores, necrosis parcial y marchitez prematura. Este patrón sintomatológico difiere de lo comúnmente descrito para Rhizoctonia solani, el cual se asocia principalmente con cancros basales y costra negra en tubérculos, sin afectación foliar evidente, lo que sugiere un comportamiento patogénico atípico (Figura 1).

Se muestran seis imágenes de diferentes partes de una planta, incluyendo un tubérculo, un tallo dañado, hojas marchitas y una flor blanca con estambres naranjas.

Descripción generada con IA

Figura 1. Daños causados por el fitopatógeno en órganos vegetativos y reproductivos de papa (Solanum tuberosum) variedad Floresta: tubérculo (A), tallo (B), hojas con lesiones secas (C), hojas con lesiones húmedas (D), flor (E) y base del tallo (F). Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Figure 1. Damage caused by the phytopathogen on vegetative and reproductive organs of potato (Solanum tuberosum) Floresta variety: tuber (A), stem (B), leaves with dry lesions (C), leaves with wet lesions (D), flower (E), and base of the stem (F). Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Los tejidos con lesiones se desinfectaron mediante una inmersión en alcohol al 95 %, seguida de una inmersión en hipoclorito de sodio al 1,5 % y un enjuague final con agua destilada autoclavada. Posteriormente, fragmentos de cada órgano se sembraron en placas Petri separadas con agar papa dextrosa (PDA) suplementado con cloranfenicol al 1 %, y se incubaron a 25 °C durante siete días en oscuridad. El crecimiento fúngico se evaluó mediante microscopía de luz y se identificó preliminarmente como Thanatephorus sp. A partir del micelio activo se realizaron aislamientos de puntas de hifas para obtener colonias puras en PDA, las cuales se incubaron a 25 °C durante quince días, en oscuridad continua.

Crecimiento de las plantas e inoculación del fitopatógeno

En macetas de plástico tipo HDPE de 3140 cm3 de volumen, se sembraron las semillas de papa de la variedad Floresta, provenientes del INTA, en un suelo de orden andisol, sin autoclavar, con una unidad por pote, para un total de 12 potes, considerados como repeticiones. Después de la siembra, las macetas se colocaron en un invernadero para su cuidado y crecimiento. Una vez que presentaron desarrollo de tallos y hojas, se procedió con la inoculación del patógeno.

Para la preparación del inóculo de cada uno de los tratamientos, se emplearon 26 g de arroz entero como medio sólido. Se colocaron diez discos de medio de cultivo PDA con micelio del fitopatógeno Thanatephorus sp. en un matraz Erlenmeyer de 100 mL (Barajas et al., 2010), incubados por un periodo de 7 días a 25 °C. La inoculación se realizó con cinco repeticiones por tratamiento.

El primer método de inoculación se realizó directamente en el suelo, colocando el patógeno en la circunferencia de la planta, con 6 g totales de arroz con inóculo, distribuidos homogéneamente en cuatro puntos en cada maceta, con un total de cinco repeticiones. En el segundo método, se inoculó por aspersión, con 50 mL de agua destilada y 26 g de arroz con el patógeno. El inóculo se asperjó en la parte aérea de la planta, tanto en hojas como en tallo. Se dejó un control sin inocular para poder comparar la sintomatología de las plantas.

Sintomatología y determinación de la presencia del patógeno

Se realizó un registro escrito y fotográfico sobre la presencia del patógeno mediante la ejecución de los postulados de Koch, con una descripción cualitativa de las plantas inoculadas para determinar la presencia o ausencia de lesiones. Se efectuó un nuevo aislamiento del tejido vegetal afectado para confirmar la presencia del fitopatógeno en las plantas enfermas, por medio de la elaboración de láminas fijas vistas en un microscopio de luz; de esta forma se corroboraron las estructuras del fitopatógeno.

Resultados

En el medio PDA se observó inicialmente una colonia de color marrón a negro, con desarrollo de micelio aéreo blanquecino que cubrió toda la superficie del medio y la formación de una capa costrosa de color marrón claro. A los 14 días posteriores a la inoculación, la colonia presentó una tonalidad general más oscura y mantuvo el micelio aéreo blanquecino (Figura 2).

Dos placas de Petri con cultivos de moho de diferentes colores y texturas sobre un fondo negro.

Descripción generada con IA

Figura 2. Crecimiento y desarrollo de Thanatephorus sp. en el medio de cultivo agar papa dextrosa. Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Figure 2. Growth and development of Thanatephorus sp. in potato dextrose agar medium. Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

La fase asexual de Rhizoctonia solani (Figura 3) mostró hifas en forma de “T” (A). Se observó el cambio de la fase anamorfa a teleomorfa (B), así como el ciclo completo en su fase sexual (C). Estas estructuras resultan difíciles de ver por tratarse de un basidiomiceto. Sin embargo, constituyen características que permiten su identificación.

Tres imágenes microscópicas muestran estructuras filamentosas teñidas en rojo, sin teñir y en verde, etiquetadas como A, B y C respectivamente.

Descripción generada con IA

Figura 3. Morfología de los grupos de Rhizoctonia sp., fase asexual (A), fase asexual a sexual (B) y fase sexual (C), vista en 40X. Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Figure 3. Morphology of the Rhizoctonia sp. groups, asexual phase (A), asexual to sexual phase (B) and sexual phase (C), seen at 40X. Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Se observaron estructuras compatibles con la reproducción sexual del fitopatógeno, incluidas la formación de un metabasidio (Figura 4B) y el desarrollo parcial de basidiósporas (Figura 4C-D). Estas estructuras se documentaron durante el crecimiento del aislamiento en PDA; sin embargo, no se establecieron condiciones específicas para inducir la fase sexual, por lo que las observaciones se limitaron a cambios morfológicos del micelio y a la presencia de estructuras reproductivas incipientes (Figura 4). Se evidenció la anastomosis hifal característica de los grupos de Rhizoctonia (Figura 5), proceso que permite la interconexión entre hifas y se asocia con la variabilidad genética del patógeno.

Microscopio muestra estructuras ramificadas con detalles resaltados en círculos en diferentes estilos de iluminación y color.

Descripción generada con IA

Figura 4. Estructuras de crecimiento de Thanatephorus sp., formación de estructuras de reproducción (A), metabasidios (B) y basidiósporas (C y D), vistas en 40X. Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Figure 4. Reproductive structures of Thanatephorus sp., formation of reproductive structures (A), metabasidia (B) and basidiospores (C and D), viewed at 40X. Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Estructuras ramificadas microscópicas con células conectadas y un círculo resaltando una unión específica.

Descripción generada con IA

Figura 5. Anastomosis de Thanatephorus sp. vista en 40X. Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Figure 5. Anastomosis of Thanatephorus sp. seen at 40X. Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Los síntomas causados por Thanatephorus sp. en las hojas de las plantas de papa de la variedad Floresta (Figura 6) se observaron en un periodo de 49 días después de la inoculación (DDI). Se presentó clorosis intervenal (Figura 6A-B) como respuesta de la planta a la presencia del patógeno, principalmente en las hojas bajeras, seguida de lesiones puntuadas de color marrón oscuro en el haz de la lámina foliar (Figura 6C-F). Posteriormente, las lesiones cubrieron la mayor parte de la hoja (Figura 6G), hasta unirse (Figura 6H) y producir la muerte del tejido vegetal (Figura 6I), lo cual se conoce como necrosis de la hoja. Sobre las lesiones se produjo un micelio blanquecino (Figura 6J). El testigo presentó un desarrollo normal, sin alteraciones fenotípicas.

Hojas con diferentes tipos de manchas y daños visibles que parecen ser síntomas de enfermedades o plagas en plantas.

Descripción generada con IA

Figura 6. Sintomatología causada por Thanatephorus sp. en el follaje del cultivo de papa (Solanum tuberosum). Lesiones iniciales (A, B, C y D), necrosis parcial (E, F y G) y senescencia de la hoja (H, I y J). Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Figure 6. Symptoms caused by Thanatephorus sp. in potato (Solanum tuberosum) crops. Initial lesions (A, B, C, and D), partial necrosis (E, F, and G), and leaf senescence (H, I, and J). Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

En tejidos jóvenes se observaron hojas incipientes con deformación tipo acucharamiento en los brotes (Figura 7A), lesiones necróticas en la lámina foliar (Figura 7B), brotes florales necrosados (Figura 7C) y deformación de la nervadura central en hojas jóvenes (Figura 7D), lo que limitó el crecimiento de la planta. Estos síntomas representaron daños iniciales asociados a Thanatephorus sp. (Figura 7) y permitieron su diferenciación de otros fitopatógenos. Posteriormente, se evidenció la formación de lesiones necróticas puntiformes en tallos, las cuales coalescieron progresivamente hasta necrosar el tejido epidérmico y provocar la apertura del tallo (Figura 8A-C), debilitando significativamente el crecimiento de la parte aérea de la planta.

Cuatro ramas de planta con hojas y brotes en diferentes estados de marchitez y daño, etiquetadas con letras A, B, C y D sobre un fondo blanco.

Descripción generada con IA

Figura 7. Sintomatología causada por Thanatephorus sp. en el tallo del cultivo de papa (Solanum tuberosum): foliolos (A, B y C) y botones florales (D). Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Figure 7. Symptoms caused by Thanatephorus sp. on the stem of potato (Solanum tuberosum) crops: leaflets (A, B, and C) and flower buds (D). Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Cuatro imágenes muestran diferentes partes de tallos y raíces de plantas con etiquetas A, B, C y D sobre un fondo claro.

Descripción generada con IA

Figura 8. Sintomatología causada por Thanatephorus sp. en el cultivo de papa (Solanum tuberosum): tallo con lesiones necróticas (A), apertura de tejidos por necrosamiento (B y C) y lesiones necróticas en la raíz (D). Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Figure 8. Symptoms caused by Thanatephorus sp. in potato (Solanum tuberosum) crops: stem with necrotic lesions (A), opening of tissues due to necrosis (B and C) and necrotic lesions on the root (D). Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Se observó la presencia de hongos oportunistas. La antracnosis (Colletotrichum spp.) (Figura 9) aprovechó las lesiones provocadas por Thanatephorus sp. en la lámina foliar del cultivo.

Una hoja con manchas marrones y amarillentas junto a una imagen microscópica que muestra estructuras celulares y esporas.

Descripción generada con IA

Figura 9. Presencia de Colletotrichum spp. con Thanatephorus sp. en el cultivo de papa (Solanum tuberosum), con lesiones visibles en el área foliar (A) y presencia de conidios en aislamientos de hojas del cultivo (B), vistas en 40X. Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Figure 9. Presence of Colletotrichum spp. with Thanatephorus sp. in potato (Solanum tuberosum) crops, with visible lesions on the leaf area (A) and the presence of conidia in leaf isolates from the crop (B), seen at 40X. Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Se observaron lesiones en las hojas, con formación de protuberancias (Figura 10), las cuales corresponden a estructuras de resistencia del fitopatógeno.

Una hoja con manchas oscuras y una imagen microscópica que muestra estructuras filamentosas con un círculo resaltando una espiral en el centro.

Descripción generada con IA

Figura 10. Estructuras de resistencia de Thanatephorus sp. en el cultivo de papa (Solanum tuberosum), esclerocios (A) y esclerocios en formación (B). Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Figure 10. Resistance structures of Thanatephorus sp. in the potato crop (Solanum tuberosum), sclerotia (A), and sclerotia in formation (B). Turrialba, Cartago, Costa Rica. 2023.

Discusión

En el cultivo de papa, Thanatephorus sp. puede afectar diversos órganos de la planta, tanto en la parte subterránea como en la parte aérea (Kumar et al., 2017). En el primer aislamiento se encontró en las lesiones de las hojas secas y no en las acuosas. El fitopatógeno presentó colonias blanquecinas con tonalidades oscuras (Figura 2), característica comprobada por Huamán Cruz y Montalvo Valencia (2019).

Morfológicamente, Thanatephorus sp. tiene una estructura de basidiomiceto (globosa) en su fase teleomorfa. Sin embargo, al igual que todas las especies de Rhizoctonia, sus hifas son septadas (Taylor & McCormick, 2008). Tiene células alargadas que producen ramificaciones en ángulo de 90° respecto a la hifa principal; en su estado perfecto, posee hifas septadas (basidios) con forma de barril o redondeada. Forma basidiosporas, las cuales son estructuras sexuales que tienen la función de diseminación de la enfermedad (Arguedas-Gamboa, 2004).

Los grupos de Rhizoctonia tienen la capacidad de fusionar las hifas con hongos compatibles y mezclar su citoplasma para generar un micelio nuevo (anastomosis) (Figura 5) (Martínez Fernández, 2003). Se conocen 13 grupos de anastomosis (AG1 a AG13), los cuales se pueden dividir en subgrupos dependiendo de características como la morfología, los requisitos de temperatura, nutrición, patogenicidad y rango de hospederos (Vieira Blanco et al., 2018), además de pruebas moleculares que permitan identificarlos. Para Rhizoctonia spp., inicialmente se reportaron cuatro grupos anastomóticos, correspondientes a AG1, AG2, AG3 y AG4. Los primeros dos grupos causan daños en fabáceas, mientras que los dos últimos afectan crucíferas y solanáceas, como la papa (Martínez Fernández, 2003).

La falta de identificación molecular limita clasificar el grupo de anastomosis al que pertenece este aislamiento, así como entender la variabilidad del patógeno. No se puede identificar si son binucleados o no, lo cual podría aumentar su variabilidad y con ello dificultar la evaluación de componentes de resistencia como la agresividad. La identificación de estos grupos ayuda en la clasificación de los grupos de anastomosis y en relacionarlos con la agresividad al afectar diferentes tejidos de la planta (Mercado Cárdenas et al., 2015).

Los diferentes grupos de Rhizoctonia tienen un amplio rango de hospederos y presentan gran diversidad de síntomas causados en los cultivos (Sistema Nacional Argentino de Vigilancia y Monitoreo de Plagas, s. f.). Afectan las plantas en cualquier etapa fenológica y órgano, principalmente en el estado de plántula. Estos daños causan muerte prematura, perjudican las raíces y provocan lesiones de tonalidad marrón en la parte aérea (Ephytia, s. f.-a).

A los 56 DDI, se desarrollaron lesiones necróticas restringidas a la epidermis de los tubérculos de papa, lo que favorece la formación de tubérculos aéreos con cancros de color café. Estos, al utilizarse como semilla, presentan pérdida de la capacidad de brotación o generan tallos débiles y deformados, así como estrangulamiento basal (Invesa, 2020). En tubérculos progenie de papa se ha reportado la presencia de lesiones irregulares de color café oscuro a negro, asociadas a estructuras esclerociales firmemente adheridas a la superficie del tubérculo, las cuales varían desde formas pequeñas y planas hasta agregados de mayor tamaño, reforzando la asociación del patógeno con la sintomatología de black scurf y el desarrollo de cancros superficiales (Mehi et al., 2025).

El fitopatógeno Thanatephorus sp. es capaz de producir daños indirectos en los cultivos, debido a que se asocia con otros fitopatógenos oportunistas, como antracnosis (Colletotrichum spp.) (Figura 9), tizón tardío (Phytophthora infestans) y algunos nematodos como Meloidogyne spp. y Globodera spp. (Ephytia, s. f.-b), los cuales aprovechan las lesiones provocadas por Thanatephorus sp. en la lámina foliar del cultivo, por lo que sus lesiones son de mayor tamaño.

Su variabilidad genética y amplio rango de hospederos permiten que Thanatephorus sp. se disemine con mayor facilidad (Jaradat et al., 2023). Este fitopatógeno puede vivir en el suelo de forma activa como saprófago en restos orgánicos, como parásito en las raíces y órganos de plantas hospederas o alternativas, e incluso de forma pasiva en estructuras como esclerocios (Sun et al., 2024). Presenta una supervivencia alta (Figuras 3, 4 y 10) y se dispersa por medio de la lluvia, agua, maquinaria, herramientas, partículas del suelo y el material vegetal.

La información generada en este estudio permitirá realizar diagnósticos en campo y mejorar el control de Thanatephorus sp. en el cultivo de papa. Se requieren más análisis de este patógeno para determinar si existe mayor variabilidad, así como estudios moleculares que permitan identificar el grupo de anastomosis al que pertenece. De esta manera, se podrá optimizar su manejo en este cultivo.

Conclusiones

Se documentó la sintomatología observada en plantas de papa asociada a aislamientos compatibles con Thanatephorus sp., incluyendo lesiones necróticas en hojas, tallos y tubérculos, así como deformaciones en tejidos jóvenes. La caracterización morfológica del crecimiento fúngico en agar papa dextrosa permitió describir estructuras miceliales y reproductivas incipientes. Estos resultados constituyen una referencia descriptiva del comportamiento del patógeno en condiciones de cultivo artificial y de los síntomas observados en campo, y aportan información base para futuras investigaciones orientadas a profundizar en su epidemiología y comportamiento en zonas paperas de la provincia de Cartago, Costa Rica.

Agradecimientos

Los autores agradecen a la Estación Experimental Dr. Carlos Durán del Instituto Nacional de Innovación y Transferencia en Tecnología Agropecuaria (INTA), ubicada en Oreamuno, Cartago, Costa Rica, por el material vegetal facilitado; a la Estación Meteorológica del Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza (CATIE) por la información climática proporcionada, así como a las personas y estudiantes de la Universidad de Costa Rica, Sede del Atlántico, que apoyaron esta investigación.

Conflicto de intereses

Los autores declaran que no existen conflictos de intereses.

Referencias

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