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Revista de Biología Tropical, ISSN: 2215-2075, Vol. 73 (S2): e64703, mayo 2025 (Publicado May. 15, 2025)
Diversidad de levaduras en frutas tropicales de Costa Rica
Keilor Rojas-Jiménez1*; https://orcid.org/0000-0003-4261-0010
Andrés Quirós-Castegnaro1; https://orcid.org/0009-0000-7599-8352
Ivonne Ramirez-Rodríguez1; https://orcid.org/0009-0006-1020-3620
Priscila Solera-Rodríguez1; https://orcid.org/0009-0001-2139-4817
Jéssica Morera-Huertas1; https://orcid.org/0000-0003-4066-4373
Mónica Vallejo-Arróliga1; https://orcid.org/0000-0001-9651-891X
1. Escuela de Biología, Universidad de Costa Rica, 11501 San José, Costa Rica; keilor.rojas@ucr.ac.cr (*corresponden-
cia), andres.quiros@ucr.ac.cr, priscilla.solera@ucr.ac.cr, ivonne.rodriguezramirez@ucr.ac.cr, jessica.morera@ucr.ac.cr,
monica.vallejo@ucr.ac.cr
Recibido 31-VIII-2024. Corregido 13-III-2025. Aceptado 25-III-2025.
ABSTRACT
Yeast diversity in tropical fruits from Costa Rica
Introduction: The yeasts consumed by the population in foods such as tropical fruits remain relatively
unknown, despite being an important component of the human microbiota and having multiple biotechnologi-
cal applications.
Methods: In this work we isolated and characterized the diversity of yeasts in fruits regularly ingested in Costa
Rica, using culture-dependent methods, morphological characterization, and ITS marker sequencing.
Results: We isolated 118 yeasts from the 26 species of tropical fruits sampled, grouped into 7 families, 11 genera,
and 19 species. Hanseniaspora pseudoguilliermondii, Pichia kluyveri and Hanseniaspora uvarum were the most
abundant species. Notably, some species were present on several fruits, others presented a more specific host
range, and some were only isolated after several months of fermentation.
Conclusion: Our work evidences the large diversity of yeasts present in tropical fruits, which motivates further
study of their ecology, physiology, and potential biotechnological uses.
Keywords: Tropical yeast, biodiversity, tropical fruits, tropical fruits, biotechnology.
RESUMEN
Introducción: Las levaduras que consume la población en alimentos como las frutas tropicales permanecen
relativamente desconocidas, a pesar de ser un componente importante de la microbiota humana y tener múltiples
aplicaciones biotecnológicas.
Métodos: En este trabajo aislamos y caracterizamos la diversidad de levaduras en frutas ingeridas regularmente
en Costa Rica, utilizando métodos dependientes de cultivo, caracterización morfológica, y secuenciación de
marcador ITS.
Resultados: Se aislaron 118 levaduras de las 26 especies de frutas tropicales muestreadas, agrupándose en 7
familias, 11 géneros y 19 especies. Hanseniaspora pseudoguilliermondii, Pichia kluyveri y Hanseniaspora uvarum
fueron las especies más abundantes. Notablemente, algunas especies estuvieron presentes en varias frutas, otras
presentaron un rango de hospedero más específico, y algunas solamente se aislaron luego de varios meses de
fermentación.
https://doi.org/10.15517/rev.biol.trop..v73iS2.64703
2Revista de Biología Tropical, ISSN: 2215-2075 Vol. 73 (S1): e64703, mayo 2025 (Publicado May. 15, 2025)
INTRODUCCIÓN
Las levaduras constituyen un grupo diver-
so de hongos predominantemente unicelulares
en su ciclo de vida, ampliamente distribuidos, y
caracterizados por dividirse asexualmente por
gemación o bipartición. Se caracterizan por
su capacidad de fermentar azúcares en alco-
hol y dióxido de carbono, por lo que desde la
antigüedad se han utilizado en la producción
de una variedad de alimentos y bebidas, como
cerveza, vino, pan y productos lácteos fermen-
tados (Johnson & Echavarri-Erasun, 2011)Al
ser organismos altamente versátiles, también
se han utilizado en diversos procesos biotecno-
lógicos con aplicaciones en áreas como salud,
ambiente, energía e industria (Tullio, 2022).
Las levaduras pueden tener un modo
de vida saprotrófico o pueden ser parásitos
de plantas, animales, o incluso otros hongos.
En los últimos años ha habido un crecien-
te interés por investigar las levaduras, tanto
para el descubrimiento de nuevas especies,
así como para desarrollar nuevas aplicaciones
(Boekhout et al., 2022; Geijer et al., 2022). Esto
ha permitido obtener nuevas cepas de levadu-
ras con capacidad de realizar diversos procesos
de producción de forma más eficiente y con
menores costos (Abdel-Banat et al., 2010; Pon-
gcharoen et al., 2018).
Las levaduras también han jugado un papel
importante como modelo de estudio en biolo-
gía celular y la genética de células eucariotas,
incluyendo el estudio de la regulación de genes,
la división celular y el metabolismo celular
(Botstein et al., 1997; Goffeau et al., 1996). En el
campo de la evolución y la ecología, se han uti-
lizado para estudiar, por ejemplo, el origen de la
multicelularidad y la evolución de la reproduc-
ción sexual, así como asociaciones simbióticas
con otros organismos y su papel en las cadenas
alimenticias de ecosistemas naturales (Starmer
& Lachanc, 2011).
Desde un enfoque filogenético, las leva-
duras conforman un grupo heterogéneo. No
representan una unidad taxonómica, sino un
estilo de vida fúngico que ha surgido de forma
independiente en varios linajes no relacionados
(Barnett, 2004; Boekhout et al., 2022; Deák &
Péter, 2013; Gouliamova et al., 2009). Por tradi-
ción, se han dividido en levaduras asociadas a
Saccharomyces, conocidas por su utilización en
las industrias de alimentos y bebidas (ej.; Sac-
charomyces cerevisiae y Saccharomyces pastoria-
nus) y levaduras no asociadas a Saccharomyces,
las cuales son propias de ambientes naturales
y participan en procesos como la descomposi-
ción de materia orgánica (ej.: Candida, Pichia y
Rhodotorula) (Kurtzman et al., 2011).
Desde un punto de vista taxonómico for-
mal, las levaduras del filo Ascomycota se clasi-
fican principalmente dentro de la subdivisión
Saccharomycotina y en las clases Schizosac-
charomycetes, Pneumocystidomycetes, Euro-
tiomycetes, Dothideomycetes. Las levaduras
del filo Basidiomycota se clasifican en las cla-
ses Cystobasidiomycetes, Microbotryomycetes,
Tremellomycetes. Incluso, también se pueden
encontrar hongos unicelulares en los filos
Chytridiomycota y Rozellomycota (Kurtzman,
1994; Kurtzman & Piškur, 2006).
En general, la diversidad de levaduras y
su amplia gama de propiedades las convierten
en un importante grupo de microorganismos
para estudiar y comprender. En particular, las
frutas tropicales pueden constituir una rica
fuente natural de levaduras, por su alto conte-
nido de azúcares, y de donde muchas especies
han sido aisladas y caracterizadas en términos
de su taxonomía y fisiología (Amorim et al.,
2018; Dasilva et al., 2005; Trindade et al., 2002).
Algunas han mostrado propiedades únicas con
Conclusión: Nuestro trabajo evidencia la gran diversidad de levaduras presentes en las frutas tropicales, que
motiva a estudiar con mayor profundidad su ecología, fisiología, y usos biotecnológicos potenciales.
Palabras clave: levaduras tropicales, biodiversidad, frutas tropicales, biotecnología.
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Revista de Biología Tropical, ISSN: 2215-2075, Vol. 73 (S2): e64703, mayo 2025 (Publicado May. 15, 2025)
alto potencial de utilización en la industria de
alimentos y bebidas.
En países tropicales como Costa Rica se
han desarrollado muy pocos estudios sobre la
diversidad de levaduras, de aquellas presentes
en ambientes naturales y, en particular, de las
que forman parte del micobioma de frutas
tropicales (Lachance et al., 2001; Lachance &
Bowles, 2004; Morais et al., 2004; Rojas-Jime-
nez et al., 2020). Esta situación representa una
limitación y a la vez una oportunidad de gene-
rar novedoso conocimiento sobre este grupo de
microorganismos, importantes desde un punto
de vista ecológico y biotecnológico.
Este trabajo tiene como objetivo contri-
buir a la generación de conocimiento sobre
la diversidad de levaduras en frutas tropicales
comúnmente ingeridas por la población costa-
rricense. Particularmente pretende determinar
qué tan diversa es la comunidad de levaduras
cultivables en las frutas, estudiar la distribución
por rango de hospedero, es decir, la cantidad
de levaduras generalistas (presentes en varias
frutas) en relación a las especialistas (restrin-
gidas a hospederos particulares). Por otro lado,
se pretende también determinar posibles inte-
racciones que pueda haber entre ellas. Esta
caracterización, hasta donde sabemos única
para la región, además servirá para analizar su
potencial aplicación biotecnológica.
MATERIALES Y MÉTODOS
Selección de frutas tropicales: Las frutas
usadas en este proyecto se adquirieron en ferias
del agricultor en el Gran Área Metropolitana,
en el centro del país. En total, se utilizaron
frutas de 26 especies, agrupadas en 14 fami-
lias de plantas. Se seleccionaron frutas lo más
maduras posibles (un ejemplar por especie),
tanto de especies nativas como introducidas
(Tabla 1). Este proyecto contó con el respec-
tivo permiso de la Comisión Institucional de
Biodiversidad de la Universidad de Costa Rica
(CBio-74-2023).
Fermentación: Del mesocarpio de cada
fruta se tomaron aproximadamente 5 gramos
de tejido, el cual se maceró y posteriormente se
colocó en un tubo Falcon de 50 mL con 30 mL
de agua destilada autoclavada. El macerado de
fruta se agitó vigorosamente y se dejó fermentar
por 7 días. El frasco se revisó y agitó cada día
durante el periodo de fermentación.
Aislamiento y Cultivo: Luego del periodo
de fermentación se tomaron 100 µL de la parte
líquida del fermento y se le agregaron 900 µL
de PBS1X (autoclavado) para hacer disolución
de 1/10 (dilución 10-1). De esta solución, se
Tabla 1
Lista de las 26 especies de frutas tropicales utilizadas en este
estudio. Se indica la familia taxonómica, el género, especie
y el nombre común. / Table 1. List of the 26 species of
tropical fruits used in this study. Taxonomic family, genus,
species, and common name are provided.
Familia Nombre científico Nombre común
Anacardiaceae Spondias purpurea Jocote
Mangifera indica Mango
Anacardium occidentale Marañón
Spondias dulcis Yuplón
Annonaceae Annona muricata Guanábana
Bromeliaceae Ananas comosus Piña
Caricaceae Carica papaya Papaya
Fabaceae Tamarindus indica Tamarindo
Malpighiaceae Byrsonima crassifolia Nance
Myrtaceae Psidium
friedrichsthalianum
Cas
Psidium guajava Guayaba
Psidium cattleyanum Guayabita del
Perú
Syzygium malaccense Manzana de
Agua
Oxalidaceae Averrhoa carambola Carambola
Averrhoa bilimbi Mimbro
Passifloraceae Passiflora adenopoda Estococa
Passiflora ligularis Granadilla
Passiflora edulis Maracuyá
Rosaceae Fragaria chiloensis Fresa
Rubus ulmifolius Mora
Eriobotrya japonica Níspero
Rubiaceae Coffea arabica Café
Sapotaceae Chrysophyllum cainito Caimito
Pouteria sapota Zapote
Solanaceae Physalis peruviana Uchuva
Zingiberaceae Curcuma longa Cúrcuma
4Revista de Biología Tropical, ISSN: 2215-2075 Vol. 73 (S1): e64703, mayo 2025 (Publicado May. 15, 2025)
preparará una segunda dilución 1/10 (para
quedar en 10-2). Se tomaron 50 µL de las dilu-
ciones 10-1 y 10-2 y se esparcieron con asa
de vidrio (previamente flameada) en placas
Petri de medio PDA (Potato Dextrose Agar)
con antibiótico (streptomicina 100 mg/ml +
penicilina 100 mg/ml). Como control positivo
se utilizó una levadura comercial de pan (Sac-
charomyces cerevisiae) y como control negativo
la solución de PBS1X sobre la placa de medio.
Adicionalmente, en el momento de generar
los cultivos se mantuvieron placas con medio
abiertas para detectar posibles contaminaciones
del ambiente. Las placas se incubaron a 28°C y
se revisaron diariamente hasta que aparecie-
ran las levaduras. Alrededor de 5 colonias por
fenotipo se sembraron por método de estriado
en nuevas placas del mismo medio de cultivo
descrito anteriormente. Una vez crecidas, una
parte del aislamiento se preservó en -80°C en
medio PDB (Potato Dextrose Broth) con gli-
cerol al 20%. Por otro lado, se tomó 10 mg de
células, se disolvieron en 300 uL de PBS1X y se
almacenaron a -20°C para la posterior extrac-
ción de ADN.
Caracterización morfológica: Utilizando
un asa microbiológica de 10 µL, se tomó la
muestra de levadura previamente cultivada
en un plato Petri, la cual se dispuso en un
portaobjetos conteniendo una gota de agua.
La muestra se distribuyó uniformemente en la
gota para asegurar una dispersión adecuada de
las células. Posteriormente, se cubrió con un
cubreobjetos y se tomó un registro fotográfico
inmediatamente después de montar la muestra.
Las imágenes fueron capturadas utilizando el
software de AmScope, junto con una cáma-
ra digital MU1803 de la misma marca. Esta
cámara se acopló al microscopio de luz Olym-
pus CH30, a través del cual se observaron las
muestras, utilizando un objetivo de 40X, para
la toma de las fotografías
Caracterización molecular: El ADN
genómico de las cepas de levaduras se aisló
utilizando el kit DNEasy Power soil kit® de
QIAGEN (Carlsbad, CA, Estados Unidos),
siguiendo las instrucciones del fabricante. Se
amplificó el marcador molecular ITS a partir
de los extractos de ADN total utilizando los pri-
mers ITS1 y ITS4 (White et al., 1990). Las reac-
ciones se realizaron con el siguiente programa
de temperatura: 98°C durante 2 min seguido
de 32 ciclos de 96°C durante 30s, 52°C durante
30s y 72°C durante 30s y 10 min de extensión
a 72°C. La amplificación de los productos se
verificó mediante electroforesis en un gel de
agarosa al 1,5% por 30 min a 90v y 200 mA.
La secuenciación tipo Sanger se llevó a cabo
en la empresa Macrogene (Corea del Sur). Las
secuencias se ensamblaron y editaron usando el
programa BioEdit (Hall, 1999). La asignación
taxonómica se realizó mediante comparaciones
de las secuencias con las bases de datos UNITE
y NCBI. Una vez identificadas las cepas se
procedió a generar un árbol filogenético. Para
esto, las secuencias se alinearon utilizando la
herramienta MAFFT v7. La calidad del alinea-
miento fue revisada con el servidor GUIDAN-
CE2 (Penn et al., 2010). La plataforma ATGC
bioinformatics (Guindon & Gascuel, 2003) con
el criterio de información Akaika fue utilizada
para la determinación del mejor modelo de
evolución y GTR con distribución gama y sitios
invariables fue aplicado (GTR+G+I). Se generó
un árbol filogenético de máxima verosimilitud
utilizando el programa FastTree versión 2.1.9
(Price et al., 2010) El árbol filogenético resul-
tante se visualizó y editó en MEGA7 (Kumar
et al., 2018).
RESULTADOS
Los análisis de morfología permitieron
determinar formas esféricas y cilíndricas entre
los diferentes géneros de levadura. También
diferentes colores, tamaños y cuerpos de inclu-
sión (Fig. 1).
En total, se aislaron 118 levaduras de las 26
especies de frutas tropicales. Por medio de la
identificación de la región ITS, las levaduras se
agruparon en 7 familias, 11 géneros y 19 espe-
cies, donde Hanseniaspora pseudoguilliermon-
dii, Pichia kluyveri y Hanseniaspora uvarum
fueron particularmente las que presentaron el
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Revista de Biología Tropical, ISSN: 2215-2075, Vol. 73 (S2): e64703, mayo 2025 (Publicado May. 15, 2025)
Fig. 1. Micrografías a 40x de las especies de levaduras aisladas de frutas tropicales. A. Pichia kluyveri, B. Pichia occidentalis, C.
Pichia Kudriavzevi, D. Pichia terrícola, E. Pichia membranifaciens, F. Pichia manshurica, G. Pichia califórnica, H. Saturnispora
diversa, I. Starmea stellimalicola, J. Hanseniespora opuntiae, K. Hanseniespora pseudoguilliermondii, L. Hanseniaspora uvarum,
M. Hanseniespora occidentalis, N. Wickerhamomyces anomalus, O. Debaryomyces hansenii, P. Candida chilensis, Q-R Candida
boidnii S. Zygoascus meyerae, T. Kazachstania gamospora. En la esquina inferior derecha de cada cuadricula se encuentra
una escala de 10 µm. / Fig 1. Micrographs at 40x of yeast species isolated from tropical fruits. A. Pichia kluyveri, B. Pichia
occidentalis, C. Pichia Kudriavzevi, D. Pichia terrícola, E. Pichia membranifaciens, F. Pichia manshurica, G. Pichia californica,
H. Saturnispora diversa, I. Starmea stellimalicola, J. Hanseniespora opuntiae, K. Hanseniespora pseudoguilliermondii, L.
Hanseniaspora uvarum, M. Hanseniespora occidentalis, N. Wickerhamomyces anomalus, O. Debaryomyces hansenii, P.
Candida chilensis, Q-R Candida boidnii, S. Zygoascus meyerae, T. Kazachstania gamospora. A 10 µm scale is located in the
lower right corner of each grid.
6Revista de Biología Tropical, ISSN: 2215-2075 Vol. 73 (S1): e64703, mayo 2025 (Publicado May. 15, 2025)
mayor número de aislamientos (Tabla 2). Todas
las secuencias de nucleótidos obtenidas en este
trabajo se depositaron en la base de datos Gen-
Bank del NCBI (Tabla S1).
Al analizar el rango de hospedero de las
levaduras, se notó que Hanseniaspora pseudo-
guilliermondii y Hanseniaspora uvarum fueron
las más generalistas, presentes en 9 y 8 especies
de frutas, respectivamente. De la misma mane-
ra, Pichia kluyveri se encontró en 5 especies de
frutas. Por otro lado, hubo nueve especies de
levaduras con un rango de distribución más
específico, encontrándose solamente en una
especie de fruta (Fig. 2).
En la mayoría de especies de frutas estu-
diadas (60%) los aislamientos de levaduras
pertenecieron a una única especie fúngica.
Sin embargo, hubo algunas especies de frutas
donde fue posible aislar varias especies de
levaduras, como en jocote (Spondias purpu-
rea) y en cas (Psidium friedrichsthalianum)
con cuatro especies (Fig. 3). También fue
posible identificar especies adicionales luego
de 8 meses de fermentación. En esta etapa de
añejamiento algunas de las especies identifica-
das en varias frutas fueron Pichia manshurica y
Saturnispora diversa.
El análisis de las relaciones filogenéticas
entre los aislamientos, determinada con el mar-
cador ITS, nos permitió evidenciar que las
frutas tropicales constituyen una fuente de
una gran variedad de levaduras. En general, se
observó que la mayoría de géneros de levadu-
ras solamente tenía una especie asociada, sin
embargo, en Pichia y Hanseniaspora se obser-
varon siete y cuatro especies asociadas, respec-
tivamente (Fig. 4).
DISCUSION
En este estudio, se aislaron e identificaron
por medio de la secuenciación de la región
ITS, 118 cepas de levaduras pertenecientes a 19
especies, distribuidas en 9 géneros y 6 familias,
Tabla 2
Distribución del número de aislamientos de levaduras obtenidos de frutas tropicales, identificados taxonómicamente a
nivel de familia, género y especie. / Table 2. Distribution of the number of yeast isolates obtained from tropical fruits,
taxonomically identified to family, genus and species level.
Familia Genero Especie Nr.
Debaryomycetaceae Debaryomyces Debaryomyces hansenii 4
Phaffomycetaceae Starmera Starmera stellimalicola 1
Wickerhamomyces Wickerhamomyces anomalus 2
Pichiaceae Candida Candida boidinii 3
Pichia Pichia californica 5
Pichia kluyveri 14
Pichia kudriavzevii 4
Pichia manshurica 7
Pichia membranifaciens 6
Pichia terricola 4
Pichia occidentalis 2
Saturnispora Saturnispora diversa 7
Saccharomycetaceae Kazachstania Kazachstania gamospora 4
Saccharomycodaceae Hanseniaspora Hanseniaspora occidentalis 3
Hanseniaspora opuntiae 9
Hanseniaspora pseudoguilliermondii 24
Hanseniaspora uvarum 14
Trichomonascaceae Zygoascus Zygoascus meyerae 3
CUG-Ser1 clade Candida Candida chilensis 1
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Fig. 2. Mapa de calor de la distribución de los aislamientos de levaduras obtenidos por especie de fruta. / Fig 2. Heat map of
the distribution of yeast isolates obtained by fruit species.
Fig. 3. A. Diversidad alfa de las comunidades de levaduras presentes en frutas tropicales de Costa Rica, B. Valores del índice
de Shannon. / Fig. 3. A. Alpha diversity of yeast communities present in tropical fruits from Costa Rica, B. Values of the
Shannon Index.
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a partir de 26 especies de frutas tropicales. Las
19 especies de levaduras identificadas corres-
ponden al filo Ascomycota, lo que coincide con
estudios previos que destacan la predominancia
de este grupo en frutas (Sperandio et al., 2023;
Trindade et al., 2002; Vale et al., 2021). Esta
predominancia se ha asociado con la mayor
eficiencia de las levaduras del filo Ascomycota
en el metabolismo de carbohidratos simples,
como glucosa y fructosa, que se encuentran en
abundancia en los tejidos de las frutas, en con-
traste con las levaduras del filo Basidiomyco-
ta, que presentan una mayor adaptación para
degradar fuentes de carbono más complejas
(Ganter et al., 2017).
La alta presencia de levaduras de los géne-
ros Hanseniaspora y Pichia coincide con estu-
dios previos que las identifican como grupos
comunes en frutas maduras (Lorenzini et al.,
2018; Ramírez-Castrillón, 2019; Trindade et
al., 2002; Vale et al., 2021). Además, especies de
los géneros Candida, Debaryomyces y Wicker-
hamomyces también han sido frecuentemente
reportadas en estos ambientes (Vadkertiová
et al., 2012; Vale et al., 2021; Sperandio et al.,
2023; Rao et al., 2008; Trindade et al., 2002). En
contraste, los géneros Zygoascus, Kazachstania,
Saturnispora y Starmera presentan pocos o
nulos reportes, según la información disponible.
Las levaduras del género Hanseniaspora
han sido vinculadas con diversas aplicaciones
biotecnológicas (Van Wyk et al., 2024). Por
ejemplo, H. opuntiae ha demostrado mejorar el
perfil aromático de la cerveza (Bourbon-Melo
et al., 2021) y ser eficaz en el control biológico
de Aspergillus ochraceus, un hongo que afecta
Fig. 4. Relaciones filogenéticas de los 118 aislamientos de levaduras obtenidos de 26 frutas tropicales. El árbol de máxima
verosimilitud se basó en secuencias del marcador ITS utilizando un modelo GTR. Los valores de Bootstrap se muestran en
los nodos. / Fig.4 Phylogenetic relationships of 118 yeast isolates obtained from 26 tropical fruits. The maximum likelihood
tree was based on ITS marker sequences using a GTR model. Bootstrap values are shown at the nodes.
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Tabla 3
Usos potenciales de los principales géneros de levaduras identificados en este estudio. / Table 3. Potential uses of the main
yeast genera identified in this study.
Género levadura Usos potenciales Referencias
Debaryomyces - Probiótico intestinal en humanos, control biológico de hongos en cultivos agríco-
las, antagonista fúngico, mejorador de contenido de nutrientes en forrajes.
(Bedolla-Torres et al., 2015;
Caruffo et al., 2015; Ramos et
al., 2017)
- Producción de proteína para acuicultura. Fermentación de productos alimentarios
por su capacidad halotolerante.
- Producción de biocombustibles, aplicaciones biomédicas, en biorremediación de
suelos salinos promoviendo e reciclaje de nutrientes y biocatálisis.
Hanseniaspora - Mejoras aromáticas y en sabor para fermentaciones primarias en cerveza y vino.
Control biológico de plagas, potencial de biotransformación de compuestos.
(Bourbon-Melo et al., 2021; Liu
et al., 2022; López et al., 2014;
Tejero et al., 2021)
- Reducción el olor a pescado y el amargor de los hidrolizados de proteínas de pes-
cado.
- Producción de proteasas usadas en industria láctea, cárnica y de panificación.
- Bioconservante por si actividad inhibitoria de Aspergillus.
Kazachstania - Usos en fermentación de bebidas alcohólicas. (Nisiotou and Nychas, 2008;
Kim et al., 2019; Balarezo-
Cisneros et al., 2023;
Urubschurov et al., 2018)
- Aplicaciones dermatológicas al reducir los síntomas de la dermatitis atópica.
- Biorefineria.
- Potenciales en panificación, probiótico intestinal en humanos. Modula respuesta
inmune y microbiota intestinal.
- Fuente de proteína en alimentación animal.
Candida - Purificación de xilitol a partir del proceso de fermentación del hidrolizado de
bagazo de caña de azúcar.
(Cardoso & Forte, 2021; Pinto
et al., 2022; Kieliszek et al.,
2017)
- Producción de biosurfactantes.
- Producción ácido cítrico, etanol, xilitol, eritritol.
Pichia - Mejoras aromáticas y en sabor para fermentaciones primarias en vinos, cervezas,
pan, agente bioprotector en la vinificación. Aplicaciones en conservación de jugos
naturales, bio-fábrica de compuestos medicinales y biotecnológicos. Producción de
biocombustible.
(Fai et al., 2014; Ganapathiwar
& Bhukya, 2023; Englezos
et al., 2022; Isia et al., 2019;
Qvirist et al., 2016)
- Probiótico en industria médica al ser tolerante al ácido estomacal y la bilis.
- Biocontrol de patógenos.
- Bioremediación. Mejora de la capacidad de degradación de fitatos y colorantes.
- Como base industrial para la producción de ácidos orgánicos.
Starmera - Grupo con fisiología y bioquímica diversa. (Kurtzman, 2011a)
- Presenta especies homotálicas y heterotálicas. Pueden tener fermentación de glu-
cosa o asimilación de nitrato.
Saturnispora - Género asociado a suelos en vida libre, así como a plantas e insectos como simbion-
tes.
(Kurtzman, 2011b)
- Aplicaciones biotecnológicas potenciales debido a su reproducción asexual y a sus
estructuras celulares particulares.
Wickerhamomyces - Mejora aromática y fermentación bebidas alcohólicas y destilados, usos en panifi-
cación, controlador de plagas en cultivos agrícolas y protección contra infecciones
vegetales mediante metabolitos.
(Druvefors et al., 2005; Sabel et
al., 2014; Madrigal et al., 2013)
- Producción de enzimas de importancia biotecnológica como Xilanasa,B- glucosi-
dasa, lipasa, esterasa, proteasa y pectinasa.
Zygoascus - Contiene poligalacturonasa que tiene aplicaciones en la clarificación de zumos de
frutas.
Lu et al., 2016; Elyasi-Far et
al., 2023; Reyns et al., 2000;
Lorenzetti et al., 2020)
- Su lipasa es un biocatalizador clave en las industrias de detergentes, alimentaria y
farmacéutica.
- Procesamiento de alimentos por su resistencia a la inactivación a alta presión.
- Fertilizante al inducir fitoalexinas glicerolinas y aumentar la actividad de peroxida-
sa, polifenoloxidasa y fenilalanina amonio-liasa en cotiledones.
10 Revista de Biología Tropical, ISSN: 2215-2075 Vol. 73 (S1): e64703, mayo 2025 (Publicado May. 15, 2025)
los frutos del café (Gimenes et al., 2023). Por
su parte, H. uvarum presenta actividad β-D-
xilosidasa, una enzima clave en la liberación
de compuestos aromáticos (Manzanares et al.,
1999) y en la degradación de xilano, princi-
pal componente hemicelulósico de las paredes
celulares vegetales y el segundo polisacárido
natural más abundante después de la celulosa
(Basit et al., 2019). Además, H. uvarum ha
sido asociada con la desnitrificación, lo que
la convierte en una posible candidata para la
eliminación de nitrógeno en sistemas de trata-
miento de aguas residuales (Zhang et al., 2018).
En cuanto a H. pseudoguilliermondii, la especie
más frecuentemente aislada en este estudio, se
ha reportado su utilidad en la mejora del sabor
y el olor de hidrolizados de pescado (Liu et al.,
2022). Aunque existen pocos estudios adicio-
nales sobre las propiedades y aplicaciones de
esta especie, su alta prevalencia y el potencial
biotecnológico demostrado en otras especies
del género sugieren que podría ser de interés
para futuras investigaciones.
Pichia fue el género con el mayor número
de especies aisladas en este estudio, siendo
Pichia kluyveri la más abundante. Actualmente,
esta especie se emplea principalmente en la
fermentación de vino, pero también ha demos-
trado ser eficaz en la fermentación de cerveza,
sidra, durián y tequila (Vicente et al., 2021).
Recientemente, otras especies del género Pichia
han sido investigadas por su potencial en la
industria del vino (Vicente et al., 2021; Zhao
et al., 2022), así como en la biosíntesis de bio-
productos de interés industrial (Shrivastava
& Sharma, 2023). En la Tabla 3 se resumen
los posibles usos biotecnológicos adicionales
de los géneros de levaduras aislados en este
trabajo, destacando aplicaciones en el desa-
rrollo de probióticos, mejora de aromas en
fermentaciones, producción de compuestos
medicinales y biocontrol. No obstante, para
algunas de estas especies, la información dispo-
nible es limitada y sus posibles aplicaciones aún
requieren evaluación.
Por otra parte, especies como Pichia man-
shurica y Saturnispora diversa, fueron identifi-
cadas en etapas avanzadas de la fermentación,
lo que indica una dinámica cambiante en la
comunidad de levaduras a lo largo del tiem-
po. Este fenómeno es común en fermentacio-
nes naturales, donde inicialmente predominan
especies adaptadas a azúcares simples, mientras
que, con el avance del proceso, emergen aque-
llas capaces de metabolizar compuestos más
complejos generados durante la fermentación
(Xie et al., 2013). Además, factores como la
temperatura y la humedad podrían influir en
la composición de estas comunidades, por lo
que será necesario un análisis más detallado en
futuras investigaciones.
Este trabajo representa, según nuestro
conocimiento, el primer estudio enfocado en
la descripción de la diversidad de levaduras
asociadas a frutas tropicales en el país. Los
resultados obtenidos evidencian la variabili-
dad en las comunidades de levaduras, algunas
frutas albergan especies dominantes, mientras
que otras presentan una alta diversidad. Esta
variabilidad subraya la importancia de inves-
tigar las comunidades microbianas presentes
en estos entornos. Además, la identificación
de levaduras con potenciales aplicaciones bio-
tecnológicas destaca la necesidad de llevar a
cabo estudios más detallados, aumentando el
número de muestras analizadas por especie
y la caracterización de perfiles enzimáticos,
que permitan explorar y aprovechar el poten-
cial biotecnológico de las cepas aisladas de
estas frutas.
Ethical statement: The authors declare
that they all agree with this publication and
made signifi-cant contributions; that there is
no conflict of interest of any kind; and that we
followed all pertinent ethical and legal proce-
dures and requirements. All financial sources
are fully and clearly stated in the acknowled-
gments section. A signed document has been
filed in the journal archives.
AGRADECIMIENTOS
Este proyecto fue apoyado por la Vice-
rrectoría de Investigación de la Universidad de
11
Revista de Biología Tropical, ISSN: 2215-2075, Vol. 73 (S2): e64703, mayo 2025 (Publicado May. 15, 2025)
Costa Rica (proyecto C3282). Se agradece la
colaboración de Gabriel Ramírez-Torres.
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