https://revistas.ucr.ac.cr/index.php/agrocostAgronomía Costarricense ISSN Impreso: 0377-9424 ISSN electrónico: 2215-2202

Evaluación de medios de cultivo in vitro para especies forestales nativas en peligro de extinción en Ecuador

Blanca Indacochea, Johann Parrales, Arturo Hernández, Carlos Castro, Máximo Vera, Azucena Zhindón, Julio Gabriel



DOI: https://doi.org/10.15517/rac.v42i1.32203

Resumen


Las especies nativas Myroxylon balsamum (bálsamo), Tabebuia crhysantha (guayacán) y Tabebuia billbergii (madero negro), son especies forestales endémicas del bosque seco de la costa del Ecuador y Perú. Los objetivos de la investigación fueron: i) desarrollar un protocolo para establecer, multiplicar plantas micropropagadas en condiciones in vitro para el establecimiento de cultivos de especies nativas amenazadas en la zona sur de Manabí y ii) definir los medios de cultivos y protocolos de desinfección más adecuados para la reproducción in vitro de las especies nativas amenazadas, empleando para el establecimiento diferentes concentraciones de Povidyn®, NaClO + Tween + HgCl2 y tiempos de exposición. De acuerdo con los resultados en la fase de establecimiento in vitro de explantes de M. balsamum, T. crhysantha y T. billbergii, se demostró que la aplicación de Povidyn® por 20 minutos + 15% NaClO + 2 gotas Tween por 5 minutos + 0,5% HgCl2 por 5 minutos, permitió reducir significativamente la contaminación de los explantes por microorganismos, alcanzando un 90%, 87% y 88% de explantes vivos respectivamente, libres de contaminación por hongos y bacterias a los 30 días de evaluación. En la fase de multiplicación in vitro, el medio MS suplementado con 2 mg.l-1 BAP + 1 mg.l-1 ANA, permitió generar el 80%, 82% y 87 de brotes sanos de M. balsamum, T. crhysantha y T. billbergii respectivamente. El enraizamiento de brotes de las 3 especies en dosis combinadas de BAP/AIB y BAP/ANA, no presentó efecto alguno. La producción in vitro de material vegetal seleccionado de M. balsamum, T. crhysantha y T. billbergii, confirma la utilidad de la micropropagación respecto del uso de técnicas convencionales.

Palabras clave


Propagación; Myroxylon balsamum; Tabebuia crhysantha; Tabebuia billbergii; vitroplantas

Texto completo:

PDF HTML

Referencias


Abbasi, NA; Pervaiz, T; Hafiz, IA; Yaseen, M; Hussain, A. 2013. Assessing the response of indigenous loquat cultivar Mardan to phytohormones for in vitro shoot proliferation and rooting. Journal of Zhejiang University Science 14(9):774-784.

Abdelnour, A; Aguilar, ME; Valverde, L. 2011a. Micropropagación de Pilón (Hieronyma alchorneoides), Agronomía Costarricense 35(2):1-9.

Abdelnour, A; Muñoz, A. 2005. Micropropagación de teca (Tectonagrandis L.f). Revista Forestal 2(5):1-11.

Ali, R; Mulwa, M; Norton, A. Skirvin, M. 2003. Micropropagation of guava (Psidium guajava L.) Pakistán. Journal or Horticultural Science and biotechnology 78(5):739-741.

Alvarado, Y. 1998. Contaminación microbiana en el cultivo in vitro de plantas. Propagación y mejora genética de plantas por biotecnología. Santa Clara: Instituto de Biotecnología de Plantas, Cuba. p. 81-104.

Barba, A. 1991. Reguladores del crecimiento vegetal (Capítulo 4). En Cultivo de Tejidos Vegetales. México: Trillas. p. 48-66.

Bernal, JA; Rojas, R; Hine, A. 2009. Optimización del proceso de enraizamiento y aclimatización de vitroplantas de Swietenia macrophylla King (Orden: Meliacea). Tecnología en Marcha 22(3):34-41.

Brack, A; Mendiola, C. 2004. Ecología del Perú. PNUD. Lima, Perú, Asociación Editorial Bruño, 495 p. Camargo, JT; Pasqual, M. 1999. Efeito do escuro e do seccionamento de internódios do porta-enxerto de macieira, cv. Marubakaido, na calogênese in vitro Revista Brasileira de Agrociência 5:81-83.

Carranza-Patiño, H; Reyes-Morán, W; Mora-Silva, W; Cevallos-Falquez, O; Escobar-Troya, E; Cadme- Arévalo, M; Nieto-Rodríguez, J; Morante Carriel, J. 2012. Propagación clonal in vitro de Swietenia macrophylla King (CAOBA). Ciencia y Tecnología 6 (2):1-8.

Castillo A. 2004. Propagación de plantas por cultivo in vitro: una biotecnología que nos acompaña hace mucho tiempo. 8 p. (en línea). Consultado 15 abr. 2017 Disponible en http:www.inia.org.uy/publicaciones/documentos/lb/ad/2004/ad_382

Castro, D; Díaz, J; Linero, J. 2002. Propagación in vitro de árboles élite de teca (Tectona grandis L.). Revista Colombiana de Biotecnología 1:49-53.

Castro, RD; Sánchez, RGA. 2010. Propagación Clonal in vitro de Eucalyptus pellita F. Muell a partir de árboles plus. Temas Agrarios 15(1):34-43.

Cob, J; Sabja, A; Ríos, D; Lara, A; Donoso, P; Arias, L; Escobar, B. 2010. Potencial de la organogénesis como estrategia para la masificación in vitro de Persea lingue en la zona Centro-Sur de Chile. Bosque 31(3):202-208.

Collado, R; Barbón, D; Agramonte, F; Jimenez, M; Pérez, G; Odalys, D; Ramírez, D. 2004. Establecimiento in vitro de ápices y segmento nodales de Swietenia macrophylla King. Biotecnología Vegetal 4(3):143-146.

Daquinta, M; Ramos, L; Capote, I; Lescano, Y; Rodriguez, R; Trina, D; Escalona, M. 2001. Micropropagación de la teca (Tectona grandis L.F.). Revista Forestal Centroamericana 35:23-28.

Delgado, MF; Cuba, M; Hechenleitner, P; Thiers, O. 2008. Propagación vegetativa de taique (Desfontainia spinosá) y tepa (Laureliopsis philippiana) con fines ornamentales. Bosque (Valdivia) 29(2):120-126.

Díaz G. 2012. Procesos morfogénicos in vitro de cedro (Cedrela montana Moritz ex Turcz) inducidos, a partir de semillas, para propagación y conservación de germoplasma. Tesis Lic. Universidad Nacional de Loja. Ecuador. 124 p.

Flores, CM; Cabañas, A; Peñalosa, I; Quintanar, R; Vázquez, J; Urzúa, M. 2009. Auxinas endógenas, AIA-Oxidasa y enraizamiento en Vigna radiata L. Wilczek inducido por auxina exógena libre y conjugada. Revista Fitotecnia 32(1):61-66.

Flores, M; Jiménez, V; Chacon, R. 2009. Cultivo de tejidos en Ficus carica con miniestacas. Revista Forestal Agronomía Mesoamericana 20(2):319-325.

Gabriel, J; Castro, C; Valverde, A; Indacochea, B. 2017. Diseños experimentales: Teoría y práctica para experimentos agropecuarios. Jipijapa, Ecuador, Grupo COMPAS, Universidad Estatal del Sur de Manabí (UNESUM). 146 p.

Gamboa, JP; Abdelnour, A. 2011. Micropropagación de melina (Gmelina arborea ROXB). Revista Agronomía Costarricense 23:69-76.

García, GR; Delgado, M; González, Y, González, A; Garriga, M; Caligari, PD; Quiroz, K. 2011. In vitro propagation of cedar (Cedrela odorata L.) from juvenile shoots Chilean Journal of Agricultural Research 71(3):376-382.

González, C; Vilca, J. 1998. Micropropagación vegetativa “in vitro” de aliso (Alnus acuminata). Cajamarca, Perú Red Andina de Semillas Forestales (RADEFORCOSUDE). 41 p.

González, J; Ramírez, F; Roberts, M; O´Connor, A; Peña, Y. 2010. Adventitious shoot induction from adult tissues of the tropical timber tree yellow Ipé primavera (Tabebuia donnellsmithii Rose [Bignoniaceae]). In

Vitro Cell. Dev. Bio. – Plant 46(5):411-421.

Gupta, P; Nadgir, A; Mascarenhas, A; Fagannathan, V. 1980. Tissue culture of foresta trees: clonal multiplication of Tectona grandis L. (teak) by tissue culture. Plant Science Letters 17:259-268.

Indacochea, B. 2013. Conservación y propagación de árboles superiores de Cordia alliodora (Ruiz & Pav). Oken, en la Microrregión Sur de Manabí. Tesis Ph. D. Cuba. Universidad de Pinar del Río. 76 p.

Jha, S; Das, S. 2004. Tissue culture of cashewnut. In Plant biotechnology and molecular markers. Srivastava, P; Srivastava, P; Narula, A; Srivastava, S. Publishers. New Delhi, India, Anamaya. p. 244-260.

Krikorian, AD. 1993. Propagación clonal in vitro. In Cultivo de tejidos en la agricultura. Fundamentos y aplicaciones. Cali, Colombia: CIAT. p. 95-125.

Kumar, M; Shanker, V; Jaiswal, U. 2009. Shoot multiplication and plant regeneration of guava (Psidium guajava L.) from nodal explants of in vitroraised plantlets. India. J. Fruit Orn. Plant Res. 17(1):29-38.

Leakey, RRB; Mesén, F; Tehoundjeu, Z; Longman, KA; Dick, JMcP; McP J. Newton, A; Matin, A; Grace, J; Munro, RC; Mutoka, PN. 1990. Low-tecnology techniques for the vegetative propagation. Commonw. For. Rev.

(3):247-256.

Limongi, R. 2012. Catálogo del banco de germoplasma de bálsamo. Programa Nacional de Forestería. Estación Experimental Litoral Sur, Ecuador. INIAP. p. 8.

Mantell, SH; Mague, SQ; Chandler FL. 1993. Cultivo de tejidos y material de propagación libre de enfermedades en el ñame. In Cultivo de tejidos en la agricultura. Fundamentos y aplicaciones. Cali, Colombia: CIAT. p.481-494.

Mantovani, NC; Henz, ET; Vestena, FS. 2001. In vitro regeneration of Louro-pardo (Cordia trichotoma (Vellozo) Arrabida ex Steudel). Forestal Science 11:93-101.

Martínez, E. 2014. Cultivo in vitro mediante mediante embriogénesis somatica y tranformacion genética del maíz con genes biosíntesis de trehalosa. Chapingo, Texcoco, México. 136 p.

Maruyama, E. 2006. Tissue culture of Swieteniamacrophylla King (Big-Leaf Mahogany) In Suzuki, K., Ishii, K; Sakurai, S; Sasaki, S. (eds.). Plantation technology in tropical forest sciencie. Tokio, Japan. Springer Verlag. p. 131-136.

McCown, BH. 2000. Recalcitrance of woody and herbaceous perennial plants: dealing with genetic predeterminism. In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant 36(3):149-154.

Méndez, D; Abdelnour, A. 2014. Establecimiento in vitro de Terminalia amazonia (Gmel.) Excell. Revista Forestal Mesoamericana Kurú 11(27):7-21.

Michigan State University. 1989. MSTAT-C. A software program for the design, management, and analysis of agronomic research experiments. Russell, D.F. (Director MSTAT). Michigan State University, Department of Crop and Soil Sciences and Department of Agricultural Economic, East Lansing, Michigan, USA.

Millán, L; Ballester, A. 2007. Micropropagación de Chlorofora tictoria L., Gaudichaud y Quercus Humboldth Bonpl. Revista Real Academia Gallega

de Ciencias 17-28.

Millán, L; Corredoira, E; San José, ME. 2011. In vitrorhizogenesis: histoanatomy of Cedrela odorata (Meliaceae) microcuttings. International Journal ot Tropical Biology 59(1):447-453.

Minchala J. 2011. Informe Proyecto “producción in vitro de Plántulads forestales para la Reforestación: Convenio Universidad Nacional de Loja_Minisyerio de Industrias y Productividad: Laboratorio de Micropropagación Vegetal. Loja-Ecuador. sp.

Ministerio de Agricultura del Perú. 2002. Manual divulgativo de las especies forestales de la reserva de biosfera del noroeste peruano (en línea). INRENA. Tumbes, Perú. 37 p. Consultado 15 abr. 2017. Disponible en https://coin.fao.org/coinstatic/cms/media/21/14042335632720/especies_forestales_bosques_secos_del_ecuador.pdf

Ministerio de Turismo. 2014. El Guayacán, el árbol que despierta a la vida 2014 (en línea). Quito, Ecuador. Consultado 15 abr. 2017. Disponible en http: //www.turismo.gob.ec/el-guayacan-el-arbol-que-despiertaa-la-vida/

Monteuuis, O; Bon, MC; Goh, DKS. 1998. Teak propagation by in vitro culture. Bois et Forests des Tropiques 256:1-11.

Muhammad, U; Madiha, B; Bilques, F. 2012. Enhanced in vitro multiple shoot induction in elite Pakistani guava cultivars for efficient clonal plant multiplication. Africa. African Jornal Biotechnology 11(44):10182-19187.

Murashige, TF; Skoog, F. 1962. A revised médium for rapid growth and biossays of tobacco cultures. Physiological Plantarum 15:473-497.

Nuñez, SN; Mora, SA; Santacruz, RF. 2008. Aplicación de técnicas de micropropagación en las especies Cordia elaeagnoides A. DC (Borraginaceae). Avances de la Investigación científica en Cuba. Semana Nacional de la Investigación. Guadalajara Nogales. Zapopan, Jalisco, México. p. 63-70.

Orellana, M. 1998. Desarrollo de un sistema de cultivo Invitro para los explantes nodales de Caoba (Swietenia macrophylla. King). Tesis M.Sc. Turrialba, Costa Rica. CATIE. 85 p.

Pelacho, AA; Glosas, LM; Cueva, RB; Sanfeliu, JL; Badia, JS; Alins GV. 2003. Aplicaciones del cultivo in vitro (en línea). Consultado. 15 abr. 2017. Diponible en http://etsea2.udl.es/invitro

Pérez, J; Mesén, F; Aguilar, M; Hilje, L. 2012. Desarrollo de un método de micropropagación aplicable a genotipos selectos de Cedrela odorata L. optimización de la fase de multiplicación Revista Forestal Centroamericana 38:67-71.

Ramírez, F; Jerónimo, J; González, J; Peña, Y. 2009. Propagación in vitro de primavera (Tabebuia donnell-smithii Rose [Bignoniaceae]). XIII Congreso Nacional de Biotecnología y Bioingeniería y VII Simposio Internacional de producción de Alcoholes y Levaduras. México.

Rathore, IS; Singh, RP; Skekhawat, NS. 1993. Clonal propagation of desert teak (Tectona ondulata) through tissue culture. Plant Science Lirnerich 79:217-222.

Rebolledo, V; Aparicio, R; Cruz, A. 2006. Estudio preliminar para la propagación in vitro de dos especies de pinos. Foresta Veracruzana 8(2):27-32.

Ríos, D; Avilés, FM; Sánchez-Olate, R; Escobar, R; Pereira, G. 2005. Variación de la tasa de enraizamiento asociada al número de subcultivo y diámetro de microtallos de castaño Castanea sativa Mill. Agricultura Técnica 65(3):258-264.

Rodríguez González, H; Hechevarría Sosa, I; Rodríguez Ferradá, CA; Rivera Amitas, MM. 2003. Propagación in vitro de Artemisia absinthium L (en línea). Rev. Cubana Plant. Med. 8(1). Consultado 15 abr. 2017. Disponible en

Romano, A; Barros, S; Martins, MA. 2000. Micropropagation of the Mediterranean tree Ceratoniasiligua. Plant Cell Tissue and Organ Culture 68:35-41.

Sánchez, M; Ríos, D; Pedraza, M; Pereira, G; Castellanos, H; Escobar, R. 2004. Propagación in vitro de Nothofagus procera ((Poepp. et Endl.) Oerst) a partir de embriones aislados. Bosque 25(1):123-128.

Schmülling, T. 2004. CYTOKININ. In Schmülling T., Encyclopedia of Biological Chemistry. Berlin: (eds.). Lennarz, W., Lane, MD. Academic Press/Elsevier Science. p. 1-7.

Schuler, I; Baquero, S; Gaona, D; Vega, E; Ramirez, R; Nieto, V; Hodson, E. 2005. Propagación in vitro del material seleccionado de Tabebuiarosea

(Bertol.) DC. (Ocobo) y Cordiaalliodora (Ruiz & Pav) Oken (Nogal cafetero). Revista Colombiana de Biotecnología 7(1):39-50.

Silva, L; de Tarso, P; de Souza, S; de Queiroz, C; Brandão, H. 2010. Efeito de diferentes reguladores de crescimento na regeneração in vitro de pau-rosa (Aniba rosaeodora Ducke). Acta Amaz. 40(2):275-279.

Smith, R. 2000. Plant Tissue Culture. Techniques and Experiments. 2ª Edición. San Diego, USA. Academic Press. 231 p.

Soto, B; Valverde, L; Rojas, A; Hine, A. 2010. Establecimiento in vitro de Cedrela salvadorensis Standl. Tecnología en Marcha 23(4):66-73.

Sotolongo, SR; Geada, LG; Cobas, LM. 2011. Félix Varela (ed.). La Habana, Cuba. Fomento Forestal. 287 p.

Sotolongo, SR. 2003. Micropropagación de Psidium salutare (Myrtaceae) Revista del Jardín Botánico Nacional 24(1-2):245-250.

Suárez I., Jarma AJ, Ávila M. 2006. Desarrollo de un protocolo para propagación in vitro de roble (Tabebuia rosea Bertol DC). Temas Agrarios 11(2):52-62.

Tagelsir, I; El-Fatih, M; Abdelghaffar, E. 2006. Enhancement or growth and control of browning of tissue cultures of guava (Psidium guajava L.). Sudan. Journal Science Technology 7(1):1-10.

Umboh, MIJ. 1988. The application of tissue culture techniques in economically important tropical trees. Biotrop Spec. Publ. 35:77-86.

Uribe, M; Delaveau, C; Garcés, R; Escobar, E. 2008. Efecto de asepsia y fitohormonas en el establecimiento in vitro de Berberidopsis corallina, a partir de segmentos nodales. Bosque 29(1):58-64.

Valverde, L; Dufour, M; Villalobos, V. 1998. In vitro organogénesis in Albizia guachapele, Cedrella odorata and Swietenia macrophylla (Fabácea,

meliácea). Revista Tropical 46(2):225-228.

Vázquez, E., Torres, S. 1995. Fisiología Vegetal. 2ª edición. Ciudad de la Habana, Cuba, Editorial Pueblo y Educación. s. p.

Villalobos, VM; Torpe, TA. 1993. Micropropagación: conceptos, metodología y resultados. In Roca, M; Mroginski, L. (eds.). Cultivo de tejidos en la agricultura. Fundamentos y aplicaciones. Cali: CIAT. p. 127-141.

Yasodha, R; Sumathi, R; Gurumurthi, K. 2005. Improved micropropagation methods for teak. Journal of Tropical Forest Science 17:63-75.


Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.


© 2017 Universidad de Costa Rica. Para ver más detalles sobre la distribución de los artículos en este sitio visite el aviso legal. Este sitio es desarrollado por UCRIndex y Open Journal Systems. ¿Desea cosechar nuestros metadatos? dirección OAI-PMH: https://revistas.ucr.ac.cr/index.php/index/oai