Obtención de plantas de girasol silvestre (Helianthus annuus L.) para un bioensayo con herbicidas

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.15517/am.2024.59522

Palabras clave:

latencia, semilla, maleza de hoja ancha, prehidratación, polocote

Resumen

Introducción. El girasol silvestre o polocote (Helianthus annuus L.) es la principal maleza anual en el cultivo de sorgo y maíz en el norte de Tamaulipas, México. Existe escasa información sobre esta especie para realizar bioensayos con herbicidas. Objetivo. Establecer una metodología para la obtención de plántulas de polocote para bioensayos con herbicidas, desde la semilla hasta la multiplicación en vivero. Materiales y métodos. La semilla de polocote se recolectó en enero del 2023, en el Campo Experimental del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias (INIFAP), en Río Bravo, Tamaulipas. Después, se ejecutó la prueba de germinación inicial sobre papel filtro y viabilidad con tetrazolio. Se comprobó latencia por baja germinación (12 %) y alta viabilidad (86 %). Se usaron doce tratamientos para romper la latencia, mediante etanol (70 %) y agua (75, 25). Como control se utilizó solamente agua. Los tratamientos se aplicaron a temperaturas de 5 °C y 20 °C, sobre papel filtro, algodón y peat moss, en cajas Petri durante siete días. Posteriormente, se mantuvieron a una temperatura de ±25 °C. Con los resultados anteriores, se estableció la fase de vivero con cuatro esquemas con trasplante de semilla pregerminada y dos con siembra directa. Resultados. El mejor tratamiento para romper latencia fue inmersión en agua a 5 °C por siete días sobre algodón, con una germinación del 73 %. Los mejores métodos para obtener plantas fueron charolas con plántulas y trasplante en macetas negras con 75 % y 50 % de supervivencia, respectivamente. La sombra inhibió el crecimiento de las plantas. La siembra directa, con o sin prehidratación de la semilla, fue desfavorable para la germinación y emergencia. Conclusión. La obtención de plántulas de girasol silvestre fue superior cuando la semilla se sometió a pretratamiento hídrico y trasplante posterior a charolas o a bolsas.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Alejandro Allende, F., García Mata, R., García Sánchez, C., Mora Flores, J. S., & Sangerman Jarquín, D. M. (2020). Competitividad de la producción de sorgo en el norte de Tamaulipas, México. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 11(1), 139–150. https://doi.org/10.29312/remexca.v11i1.1914

Baucom, R. S. (2019). Evolutionary and ecological insights from herbicide-resistant weeds: what have we learned about plant adaptation, and what is left to uncover? New Phytologist, 223(1), 68–82. https://doi.org/10.1111/nph.15723

Bentivegna, D. J., Gabriela, G. L., Daddario, J. F. F., & Tucat, G. (2017). Determination of optimal doses of glyphosate for controlling weeds at several stages in southwestern Buenos Aires province (Argentina). Journal of Plant Protection Research, 57(4), 347–354. https://doi.org/10.1515/jppr-2017-0047

Bolaños-Jiménez, J., Uscanga-Mortera, E., Tafoya-Razo, J. A., Kohashi-Shibata, J., & Torres-García, J. R. (2018). Efectividad biológica de herbicidas inhibidores de la acetil coenzima a carboxilasa y acetolactato sintasa y la presencia de resistencia en Echinochloa crus-galli (L.) Beauv. Agrociencia, 52(5), 713–723. https://www.agrociencia-colpos.org/index.php/agrociencia/article/view/1699/1699

Burgos, N. R. (2015). Whole-plant and seed bioassays for resistance confirmation. Weed Science, 63(SP1), 152–165. https://doi.org/10.1614/WS-D-14-00019.1

Burgos, N. R., Patrick, J., Tranel, J., Streibig, J. C., Vince, D. M., Dale, S., Norsworthy, J. K., & Ritz, C. (2013). Review: Confirmation of resistance to herbicides and evaluation of resistance levels. Weed Science, 61(1), 4–20. https://doi.org/10.1614/WS-D-12-00032.1

Castillo, L. E., Pritchard, H. W., & Finch, S. W. E. (2019). Comparison of seed and seedling functional traits in native Helianthus species and the crop H. annuus (sunflower). Plant Biology, 21(3), 533–534. http://doi.org/10.1111/plb.12928

Debaeke, P. P., Pierre, C., Francis, F. L., & Nicolas, B. L. (2017). Sunflower crop and climate change: vulnerability, adaptation, and mitigation potential from case-studies in Europe. Oil and Fat Crops Lipids, 24(1), Article D102. https://doi.org/10.1051/ocl/2016052

Espitia Camacho, M., Cardona Ayala, C., & Aramendiz Tatis, H. (2017). Morfología y viabilidad de semillas de Bombacopsis quinata y Anacardium excelsum. Cultivos Tropicales, 38(4), 75–83.

Gatot, S. S. (2021). Growth pattern of sunflower on some light intensity in the coastal land. Earth Environmental Science, 752, Article 012019. https://doi.org/10.1088/1755-1315/752/1/012019

González, J., Mancuso, N., & Ludueña, P. (2013). Sunflower yield and climatic variables. HELIA, 36(58), 69–76. https://doi.org/10.2298/hel1358069g

Haj, S., Ghaier, A., Khaeim, H., Tarnawa, Á., Kovács, G. P., Gyuricza, C., & Kende, Z. (2023). Germination and seedling development responses of sunflower (Helianthus annuus L.) seeds to temperature and different levels of water availability. Agriculture, 13(3), Article 608. http:/doi.org/10.3390/agriculture13030608

Hsu, P.-C., Hsu, H.-H., Hong, H.-J., Chen, Y.-T., Chen, Y.-L., & Tseng, W.-L. (2022). 2021 Texas cold snap: manifestation of natural variability and a recent warming trend. Weather and Climate Extremes, 37, Article 100476. https://doi.org/10.1016/j.wace.2022.100476

Hulme, P. E. (2023). Weed resistance to different herbicide modes of action is driven by agricultural intensification. Field Crop Research, 292, Article 108819. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2023.108819

International Seed Testing Association. (2019). The germination test. In International Seed Testing Association (Ed.). International rules for seed testing (2021 ed., pp. i5-56-64). International Seed Testing Association.

Kutschera, U., & Briggs, W. R. (2016). Phototropic solar tracking in sunflower plants: an integrative perspective. Annals Botany, 117(1), 1–8. https://doi.org/10.1093/aob/mcv141

Laforest, M., & Soufiane, B. (2018). Coevolution of two sulfonylurea-resistant common chickweed (Stellaria media) biotypes with different mutations in the acetolactate synthase gene. Weed Science, 66(4), 439–445. http://doi.org/10.1017/wsc.2018.26

Li, M., Yu, Q., Han, H., Vila-Aiub, M., & Powles, S. B. (2013). ALS herbicide resistance mutations in Raphanus raphanistrum: evaluation of pleiotropic effects on vegetative growth and ALS activity. Pest Management Science, 69(6), 689–695. https://doi.org/10.1002/ps.3419

Mercado, S., Caleño, J., & Rozo, L. (2020). Improvement of the methodology of the tetrazolium test using different pretreatments in seeds of the genus Epidendrum (Orchidaceae). Journal of Seed Science, 42, Article e202042013.https://doi.org/10.1590/2317-1545v42231028

Mercer, K. L., Emry, D. J., Snow, A. A., Kost, M. A., Pace, B. A., & Alexander, H. M. (2014). Fitness of crop-wild hybrid sunflower under competitive conditions: implications for crop-to-wild introgression. PLoSONE, 9(10), Article e109001. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0109001

Milivojevic, M., Ripka, Z., & Petrovic, T. (2018). ISTA rules changes in seed germination testing at the beginning of the 21st century. Journal on Processing and Energy in Agriculture, 22(1), 40–45. http://doi.org/10.5937/JPEA1801040M

Montes García, N., Cisneros López, M. E., Díaz Franco, A., Espinosa Ramírez, M., & Álvarez Ojeda, M. G. (2020). Remolacha azucarera (Beta vulgaris L.) como cultivo alternativo en el noreste de Tamaulipas, México: factores agrotecnológicos. Agricultura, Sociedad y Desarrollo, 17(3), 547–568. http://dx.doi.org/10.22231/asyd.v17i3.1371

Nasreen, S., Ayub, K. M., Muhammad, Z., Mehwish, I., Saleem, U. A., & Zarrin, F. R. (2015). Response of sunflower to various pre-germination techniques for breaking seed dormancy. Pakistan Journal of Botany, 47(2), 413–416. https://www.researchgate.net/publication/275045378

Ofosu, R., Evans, D., Agyemang, A., György, P., János, T., & Gabriella, K. (2023). Herbicide resistance: managing weeds in a changing world. Agronomy, 13(6), Article 1595. https://doi.org/10.3390/agronomy13061595

Panozzo, S., Scarabel, L., Collavo, A., & Sattin, M. (2015). Protocols for robust herbicide resistance testing in different weed species. Journal of Visualized Experiments, 101, Article 52923. https://doi.org/ https://doi.org/10.3791%2F52923

Pérez, P. L. (2018). ¿Cómo proceder ante el incumplimiento de las premisas de los métodos paramétricos? o ¿cómo trabajar con variables biológicas no normales? Revista del Jardín Botánico Nacional, 39, 1–12. https://www.researchgate.net/publication/327752027

Reséndiz Ramírez, Z., López Santillán, J. A., Briones Encinia, F., Mendoza Castillo, M. del C., & Varela Fuentes, S. E. (2014). Situación actual de los sistemas de producción de grano de maíz en Tamaulipas, México. Investigación y Ciencia, 22(62), 69–75.

Rivero Aragón, A., & Grillo Ravelo, H. (2018). Fenología de la interacción girasol- Homoeosoma electellum Hulst. para el desarrollo de estrategias de control. Idesia, 36(4), 81–86. https://dx.doi.org/10.4067/S0718-34292018005002602

Rosales-Robles, E., Sánchez-de la Cruz, R., & Cerda-García, P. A. (2011). Control químico de maleza de hoja ancha en sorgo para grano. Revista Fitotecnia Mexica, 34(4), 269–275. http://dx.doi.org/10.35196/rfm.2011.4.269

Ruíz, B. M., & Parera, C. A. (2013). Efecto del estrés hídrico y salino sobre la germinación de Atriplex nummularia (Chenopodiaceae). Acta Biológica Colombiana, 18(1), 99–106.

Salazar, S., Botello, H., & Quintero, J. (2019). Pre-treatments effect on the tetrazolium test on Epidendrum barbaricum Hágsater and Dodson seeds. Acta Agronómica, 68(4), 306–311. https://doi.org/10.15446/acag.v68n4.79619

Sarmiento-Muñoz, T., Alanís-Rodríguez, E., Mata-Balderas, J. M., & Mora-Olivo, A. (2019). Estructura y diversidad de la vegetación leñosa en un área de matorral espinoso tamaulipeco con actividad pecuaria en Nuevo León, México. CienciaUAT, 14(1), 31–44. https://doi.org/10.29059/cienciauat.v14i1.1001

Seiler, G. J. (2022). Germination and viability of wild sunflower species seeds stored at room temperature and low humidity for 38 years. Seed Science and Technology, 50(3), 307–315. https://doi.org/10.15258/sst.2022.50.3.01

Seiler, G. J., Lili, L., Qi, L. L., & Marek, L. F. (2017). Utilization of sunflower crop wild relatives for cultivated sunflower improvement. Crop Science, 57(3), 1083–1101. https://doi.org/10.2135/cropsci2016.10.0856

Singh, V., Etheredge, L., Mcginty, J., Morgan, G., & Bgavathiannan, M. (2020). First case of glyphosate resistance in weedy sunflower (Helianthus annuus). Pest Managment Science, 76(11), 3685–3692. https://doi.org/10.1002/ps.5917

Singkaew, J., Miyagawa, S., Wongs-Aree, C., Vichitsoonthonkul, T., Sokaokha, S., & Photchanachai, S. (2017). Season, fruit maturity, and storage affect on the physiological quality of F1 hybrid ‘VTM580’ tomato seeds and seedlings. The Horticulture Journal, 86(1), 12–131. https://doi.org/10.2503/hortj.MI-087

Struve, D. K. (2009). Tree establishment: a review of some of the factors affecting transplant survival and establishment. Arboriculture and Urban Forestry, 35(1), 10–13. http://dx.doi.org/10.48044/jauf.2009.003

Székács, A. (2021). Herbicide mode action. In R. Mesnage, & J. G. Zaller (Eds.), Herbicides: chemistry, efficacy, toxicology, and environmental impacts (pp. 41–86). Elsevier publishing. https://doi.org/10.1016/C2019-0-04861-3

Thompson, C. R., Dille, A., & Peterson, D. E. (2019). Chapter 15. Weed competition and management in sorghum. In I. A. Ciampitti, & P. V. Vara Prasad (Eds.), Sorghum, A State of the Art and Future Perspectives (pp. 347–360). Crop Science. https://doi.org/10.2134/agronmonogr58.c15

Toca, A., Moler, E., Nelson, A., & Jacobs, D. (2022). Environmental conditions in the nursery regulate root system development and architecture of forest tree seedlings: a systematic review. New Forests, 53, 1131–1143. http://dx.doi.org/10.1007/s11056-022-09944-8

Warrick, B. E. (n. d.). Sunflower production guide. Texas A&M Agrilife Extention. Retrieved August 17, 2023. https://sanangelo.tamu.edu/extension/agronomy/agronomy-publications/sunflower-production-guide/

Publicado

2024-09-23

Cómo citar

Cisneros-López , M. E., Valdez-Hernández, M. Ángel, Ortiz-Chairez, F. E., Espinosa-Ramirez, M. ., Garza-Cedillo, R. D., & Galicia-Juárez, M. (2024). Obtención de plantas de girasol silvestre (Helianthus annuus L.) para un bioensayo con herbicidas. Agronomía Mesoamericana, 36, 59522. https://doi.org/10.15517/am.2024.59522

Número

Sección

Notas Técnicas