Agronomía Costarricense ISSN Impreso: 0377-9424 ISSN electrónico: 2215-2202

OAI: https://revistas.ucr.ac.cr/index.php/agrocost/oai
Effect of Trichoderma spp., Paecilomyces lilacinus and nematicide injection into the pseudostem, on Radopholus similis control and banana production
PDF (Español (España))

Keywords

combate biológico
Musa AAA
nematicida químico
nematodo barrenador
oxamil inyectado
biological control
burrowing nematode
chemical nematicide
injecting oxamyl
Musa AAA

How to Cite

Vargas, R., Wang, A., Obregón, M., & Araya, M. (2015). Effect of Trichoderma spp., Paecilomyces lilacinus and nematicide injection into the pseudostem, on Radopholus similis control and banana production. Agronomía Costarricense, 39(2). https://doi.org/10.15517/rac.v39i2.21774

Abstract

The effect of Trichoderma spp., strains PB17 and B23, Paecilomyces lilacinus UNA strain, and nematicide injecting into the pseudostem, on nematode control and banana (Musa AAA) production was evaluated. A commercial banana farm infested with nematodes and planted with the cultivar Grande Naine was selected. A randomized complete block design with 6 replications was used. Monthly applications at 1 * 109 cfu.ml-1 of each strain were made during 20 months. Chemical nematicide application on the soil surface was made every 4 months and injection of oxamyl into the pseudostem was performed every 3 months. Root samples were taken every month in each replicate, for nematode analysis. It was not possible to reduce nematode populations on plants treated with P. lilacinus UNA strain nor with Trichoderma spp. PB17 and B23 strains. However, plants treated with these strains showed higher bunch weight (p=0.0375) and girth (p=0.0402) of the mother plant, when compared with plants without such application. The plants injected with oxamyl and those treated with the rotation of nematicides on the soil surface showed a higher percentage of functional roots (p<0.0241) and reduced (p<0.0001) the total number of nematodes in 43 and 41% respectively, when compared with the untreated control. The plants injected with oxamyl increased bunch weight by 3.2 kg (p=0.0006) and showed greater (p<0.0478) number of hands, calibration, length of the fruit and stem circumference, as compared to plants without application. There were no differences in production variables evaluated when comparing the rotation of nematicides on the soil surface with injecting oxamyl on the pseudostem.
https://doi.org/10.15517/rac.v39i2.21774
PDF (Español (España))

References

AFFOKPON A., COYNE D., HTAY C., DOSSOU R., LAWOUIN L., COOSEMANS J. 2011. Biocontrol potential of native Trichoderma isolates against root-knot nematodes in West African vegetable production systems. Soil Biology & Biochemistry 43:600-608.

AGUILAR A. 2002. Identificación de hongos asociados al deterioro radicular del banano (Musa AAA) y su relación con el daño causado por el nematodo barrenador (Radopholus similis, Cobb) en fincas de la vertiente del Caribe de Costa Rica. Tesis de licenciatura, ITCR. San Carlos, Costa Rica. 57 p.

ARAYA M. 1995. Efecto depresivo de ataques de Radopholus similis en banano (Musa AAA). CORBANA 20(43):3-6.

ARAYA M. 1999. Efecto del Furadan 4F y Vydate 24%SL aplicados en el pseudotallo de la planta de banano (Musa AAA) sobre el rendimiento y las poblaciones de nematodos. CORBANA 24(51):1-10.

ARAYA M. 2002. Metodología utilizada en el laboratorio de Nematología de CORBANA S.A. para la extracción de nematodos de las raíces de banano (Musa AAA) y plátano (Musa AAB). CORBANA 28(55):97-110.

ARAYA M. 2004a. Inyección de Vydate y Nemacur en el pseudotallo de los hijos de sucesión de banano (Musa AAA) para el control de nematodos. CORBANA 30(57):59-75.

ARAYA M. 2004b. Situación actual del manejo de nematodos en banano (Musa AAA) y plátano (Musa AAB) en el trópico americano, pp. 79-102. In: Manejo convencional y alternativo de la Sigatoka negra, nematodos y otras plagas asociadas al cultivo de musáceas en los trópicos (2003, Guayaquil, EC).

Guayaquil, EC. ARAYA M., CENTENO M., CARILLO W. 1995. Densidades poblacionales y frecuencia de los nematodos parásitos de banano (Musa AAA) en nueve cantones de Costa Rica. CORBANA 20(43):6-11.

ARAYA M., CHEVES A. 1997a. Efecto de cuatro nematicidas sobre el control de nematodos en banano (Musa AAA). CORBANA 22(47):35-48.

ARAYA M., CHEVES A. 1997b. Comparación de tres diferentes formulaciones comerciales de terbufos en el combate de nematodos, la recuperación del sistema radical y el rendimiento del banano (Musa AAA). CORBANA 22(48):9-22.

ARAYA M., DE WAELE D. 2002. Effect of soil type on the spatial distribution of Radopholus similis on banana roots. International Journal of Nematology 12(2):137-144.

ARAYA M., DE WAELE D. 2004. Spatial distribution of nematodes in three banana (Musa AAA) root parts considering two root thickness in three farm management systems. Acta Oecologica 26(2):137- 148.

ARAYA M., DE WAELE D., VARGAS R. 2002. Occurrence and population densities of nematode parasites of banana (Musa AAA) roots in Costa Rica. Nematropica 32:21-33.

ARAYA M., MOENS T. 2005. Parasitic nematodes on Musa AAA (Cavendish subgroup cvs ‘Grande Naine’, ‘Valery’ and ‘Williams’, pp. 201-223. In: D.W. Turner and F.E. Rosales (eds.). Banana root system: towards a better understanding for its productive management. Proceedings of an international symposium (2003, San José, Costa Rica). Memoria. INIBAP, Montpellier, FR.

ATHMAN S.Y. 2006. In vivo screening of endophytic Fusarium oxysporum isolates for activity against Radopholus similis in tissue culture banana plants. Chapter 3, PhD, thesis, University of Pretoria. South Africa. pp. 77-113.

CAÑIZARES C. 2003. Estudio sobre poblaciones de hongos endofíticos provenientes de suelos supresivos al nematodo barrenador Radopholus similis (Cobb) Thorne en plantaciones comerciales de plátano en la zona de Talamanca, Costa Rica. Tesis de maestría, CATIE. Turrialba, Costa Rica. 75 p.

CASTRILLÓN C., BOTERO M.J., CARDONA J.S., URREA C.F., ZULUAGA L.E., MORALES H., ALZATE G. 2004. Efecto de Paecilomyces lilacinus en el manejo integrado de nematodos parásitos en plátano ‘Dominico Hartón’ (Musa AAB), pp. 268- 274. In: XVI Reunión Internacional ACORBAT, (2004, Oaxaca, MX). Memoria. Oaxaca, MX. CHÁVEZ N. 2007. Utilización de bacterias y hongos endofíticos para el control biológico del nematodo barrenador Radopholus similis (Cobb) Thorn. Tesis de maestría, CATIE, Turrialba, Costa Rica. 85 p.

CUBILLOS G., BARRIAGA R., PÉREZ L. 1980. Control químico de nematodos en banano Cavendish cv. Grande Naine en la región de Urabá, Colombia. Fitopatología Colombiana 9(2):58-70.

DACKMAN C., CHET I., NORDBRING B. 1989. Fungal parasitism of the cyst nematode Heterodera schachtii: infection and enzymatic activity. FEMS Microbiology Ecology 62:201-208.

EAPEN S.J., BEENA B., RAMANA K.V. 2005. Tropical soil microflora of spice-based cropping systems as potential antagonists of root-knot nematodes. Journal of Invertebrate Pathology 88:218-225. FALLAS G. 2009. Una opción promisoria para combate de nematodos en banano. In XXXI Reunión anual de la Organización de Nematólogos de los trópicos americanos. (Maceió, BR, 2009). Consultado 16 de febrero del 2011. Disponible en http://abis.upc.es/ onta/sites/default/files/S26%20una%20opcion%20-promisoria%20para%20combate%20de%20nematodos%20en%20banano.pdf

FERNÁNDEZ E., MENA J., GONZÁLEZ J., MÁRQUEZ M.E. 2005. Biological control of nematodes in banana, pp. 193-200. In: D.W. Turner and F.E. Rosales (eds.). Banana root system: towards a better understanding for its management. (2003, San José, CR). Memorias. Montpellier, FR.

FERNÁNDEZ G.E. 2006. Consideraciones sobre los agentes de control biológico de nematodos, pp. 21-22. In: Taller Latinoamericano Biocontrol de Fitopatógenos con Trichoderma y otros Antagonistas. (2006, La Habana, CU). Memorias. La Habana, CU.

FIGUEROA A. 1987. Efecto del combate de nematodos en una finca bananera, pp. 215-217. In: VII Reunión ACORBAT (1985, San José, Costa Rica). Memorias.

FIGUEROA A., SHILLINGFORD C. 1984. Efecto de las dosis y del punto de aplicación del oxamyl en su translocación y control de los nematodos del banano. ASBANA 8(21):3-7.

GOWEN S.R., QUÉNÉHERVÉ P., FOGAIN R. 2005. Nematodes parasites of bananas and plantains, pp. 611–643. In: M. Luc, R.A. Sikora and J. Bridge, (eds.). Plant Parasitic Nematodes in Tropical and Subtropical Agriculture. 2nd ed. Wallingford: CAB International.

HARMAN G.E., SHORESH M. 2007. The mechanisms and applications of symbiotic opportunistic plant symbionts, pp.131-155. In: M. Vurro and J. Gressel (eds.). Novel Biotechnologies for Biocontrol Agent Enhancement and Management.

HERNÁNDEZ T., CARRIÓN G., HEREDIA G. 2011. Solubilización in vitro de fosfatos por una cepa de Paecilomyces lilacinus (Thom) Samson. Agrociencia 45:881-892.

JARAMILLO R., QUIRÓS J. 1984. Evaluación de cinco nematicidas en el control de Radopholus similis (Cobb) Thorne en la zona bananera de Urabá, Colombia.

AUGURA 10(2):73-88. JARAMILLO R., VÁSQUEZ A. 1990. Manual de procedimientos para presentación y realización de estudios detallados de suelos y clasificación de tierras para el cultivo de banano. San José, CR. Asociación Bananera Nacional. 29 p.

JATALA P., KALTENBACH R., BOCANGEL M. 1979. Biological control of Meloidogyne incognita acrita and Globodera pallida on potatoes. Journal of Nematology 11:303.

KIEWNICK S., NEUMANN S., SIKORA R., FREY J. 2011. Effect of Meloidogyne incognita inoculum density and application rate of Paecilomyces lilacinus strain 251 on biocontrol efficacy and colonization of eggs masses analyzed by real-time quantitative PCR. Phytopathology 101:105-112.

KIEWNICK S., SIKORA R. 2006a. Biological control of the root-knot nematode Meloidogyne incognita by Paecilomyces lilacinus strain 251. Biological Control 38:179-187.

KIEWNICK S., SIKORA R. 2006b. Evaluation of Paecilomyces lilacinus strain 251 for the biological control of the northern root-knot nematode Meloidogyne hapla Chitwood. Nematology 8(1):69- 78.

KUNERT J., ZEMEK J., AUGUSTIN J., KUNIAK L. 1987. Proteolytic activity of ovicidal soil fungi. Biología (Bratislava) 42:695-705.

LUTH P., MENDOZA A., PHILLIP G. 2006. The biological nematicide Bioact and its efficacy in banana production, p. 68. In: XXXVIII ONTA Annual Meeting. Memorias. San José, Costa Rica.

MARÍN D.H., SUTTON T.B., BARKER K. 1998a. Dissemination of bananas in Latin America and the Caribbean and its relationship to the occurrence of Radopholus similis. Plant disease 82(9):964-974.

MARÍN D.H., SUTTON T.B., BARKER K.R., KAPLAN D.T., OPPERMAN C.H. 1998b. Burrowingnematode resistance of black Sigatoka resistant banana hybrids. Nematropica 28(2):241-247.

McKENRY M. 1981. The nature, mode of action, and biological activity of nematicides, pp. 59-73. In: D. Pimentel (ed.). Handbook of Pest Management in Agriculture. Florida, US, CRC Pres.

McKENRY M. 1994. Nematicides, pp. 87-95. In: Encyclopedia of Agricultural Science. Vol. 3. New York, US, Academic Press.

MENDOZA A., SIKORA R. 2009. Biological control of Radopholus similis in banana by combined application of the mutualistic endophyte Fusarium oxysporum strain 162, the egg pathogen Paecilomyces lilacinus and the antagonistic bacteria Bacillus firmus. BioControl 54:263-272.

MENESES A. 2003. Utilización de hongos endofíticos provenientes de banano orgánico para el control biológico del nematodo barrenador Radopholus similis (Cobb) Thorne. Tesis de maestría, CATIE, Turrialba, Costa Rica. 67 p.

MENJIVAR R. 2005. Estudio del potencial antagonista de hongos endofíticos para el biocontrol del nematodo barrenador Radopholus similis en plantaciones de banano en Costa Rica. Tesis de maestría, CATIE, Turrialba, Costa Rica. 69 p.

MITCHELL D.J. 1985. Report of fungal isolations from banana roots and subsequent pathogenicity tests. Department of Plant Pathology, University of Florida. Gainesville, Florida. Sin publicar. 10 p. MOENS T., ARAYA M. 2002. Efecto de Radopholus similis, Meloidogyne incognita, Pratylenchus coffeae y Helicotylenchus multicinctus en la producción de Musa AAA cv. Grande Naine. CORBANA 28(55):1- 16.

MOENS T., ARAYA M., SWENNEN R., DE WAELE D. 2004. Enhanced biodegradation of nematicides after repetitive applications and its effect on root and yield parameters in commercial banana plantations. Biol. Fertil. Soils 39:407-414. MOENS T., ARAYA M., SWENNEN R., DE WAELE D., SANDOVAL J. 2003. Growing medium, inoculum density, exposure time, and pot volume: factors affecting the resistance screening for Radopholus similis in banana (Musa spp.). Nematropica 25:67-70.

MOLINA M., FIGUEROA A. 1988. Efectos de los nematicidas en el control de los nematodos y la producción del banano. ASBANA 12(29):19-25.

MUGNIER J. 1988. Transport of the nematicide oxamyl in roots transformed with Agrobacterium rhizogenes. Annals of Applied Nematology 2:29-33.

MURRAY D.S. 1980. Uso de nematicidas en escala comercial en plantaciones bananeras del Atlántico.

ASBANA 4(13):8-16. NÚÑEZ T. 2006. Estudio de poblaciones de bacterias endofíticas de la rizósfera del banano para el biocontrol del nematodo barrenador Radopholus similis. Tesis de maestría, CATIE, Turrialba, Costa Rica. 62 p.

PATTISON A.B. 2014. Pseudostem injection of Nemacur 400 and Nemacur 240 CS for the management of burrowing nematodes on bananas. Final report project. Queensland Department of Primary Industries. South Johnstone, AU. pp. 1-11.

PATTISON A.B., COBON J.A. 2003. Integrated systems for managing nematodes on bananas. Final report project FR99011. Horticulture Australia Limited. pp. 28-45.

PATTISON A.B., VERSTEEG C.A., McQUINN D.J., MATTHEWS N.J., FARNSWORTH W., PIPER R. 2001. Management of burrowing nematodes in bananas using pseudostem injection of Vydate® L. 13th Australasian Plant Pathology Conference, Cairns. p. 366.

PARK J.O., HARGREAVES J.R., McCONVILLE E.J., STIRLING G.R., GHISALBERTI E.L. 2004. Production of leucinostatins and nematicidal activity of Australian isolates of Paecilomyces lilacinus (Thom) Samson. Letters in Applied Microbiology 38:271-276.

PÉREZ C.N. 2004. Manejo ecológico de plagas. La Habana, CU, CEDAR. 296 p.

PÉREZ D.J.M., PÉREZ N.C., ACOSTA O., GANDARILLA H., PÉREZ A., RODRÍGUEZ R.C., BASTERRECHEA M., FERNÁNDEZ E., ESTEFANOVA M., ROBAINA N., OLIVARES N., SANTANA T., GONZÁLEZ M., LLUVIDES J., DEVESA L.J., GUTIÉRREZ E., ANDREU C. 2006. Trichoderma, alternativa para el control biológico de nematodos en el marco de una agricultura sostenible, p. 25. In: Taller Latinoamericano Biocontrol de Fitopatógenos con Trichoderma y otros Antagonistas. Memorias. La Habana, Cuba. PHILIP G.M. 2005. Final report on the third nursery trial of BioAct®WG on banana plantlets in Calinan, The Philippines. Davao, PH. 4 p.

PHILIP G.M. 2007a. The Compostela Bioact®WG demonstration farm. Summary of results and conclusions. Revised demonstration farm report Nº. 1. Biotech resources for Agriculture & Industry. Mindanao, PH. 14 p.

PHILIP G.M. 2007b. The Magatos Bioact®WG demonstration farm. Summary of results and conclusions. Revised demonstration farm report Nº. 2. Biotech resources for Agriculture & Industry. Mindanao, PH. 13 p.

PINOCHET J., STOVER R.H. 1980. Fungi associated with nematode lesions on plantains in Honduras. Nematropica 10(2):112-115.

POCASANGRE L.E., MENJIVAR R.D., ZUM FELDE A., RIVEROS A.S., ROSALES F.E., SIKORA R.A. 2006. Hongos endofíticos como agentes biológicos de control de fitonematodos en banano, pp. 249- 254. In: XVII Reunión ACORBAT. (2006, Santa Catarina, BR). Abstracts. Santa Catarina, BR.

POCASANGRE L.E., ZUM FELDE A., MENESES A., CAÑIZARES C., RIVEROS AS., ROSALES F.E., SIKORA R. 2004. Manejo alternativo de fitonematodos en banano y plátano, pp. 106-112. In: XVI Reunión Internacional de ACORBAT. Resúmenes. Oaxaca, MX.

QUÉNÉHERVÉ P. 2009. Integrated management of banana nematodes, pp. 3-45. In: Integrated management of fruit crops and forest nematodes. A. Ciancio and K.G. Mukerji. (eds.).

RAMÍREZ A., PANIAGUA R. 1988. Evaluación de tres nematicidas en el control de nematodos y en la producción de banano (Musa AAA, var. Cavendish Gigante) en Costa Rica, p. 5. In: XXX Reunión Anual de la Organización de Nematólogos de los Trópicos Americanos (ONTA) (1988, San José, Costa Rica).

ROBALINO G., ROMÁN J., CORDERO M. 1983. Efecto del nematicida-insecticida oxamil aplicado al suelo y en las axilas de las hojas del bananero. Nematropica 13(2):135-143.

ROMÁN J. 1978. Nematodos del bananero y el platanero. In Fitonematología tropical. Master typesetting of Puerto Rico, Inc. Río Piedras, PR. 256 p.

ROMERO D., TRABANINO R. 2006. Efectos de la aplicación de Paecilomyces lilacinus en el control de Meloidogyne spp., en pepino, pp. 1-2. In: Taller Latinoamericano Biocontrol de Fitopátogenos con Trichoderma y otros Antagonistas. (2006, La Habana, CU). Memorias. La Habana, CU.

SAHEBANI N., HADAVI N. 2008. Biological control of the root-knot nematode Meloidogyne javanica by Trichoderma harzianum. Soil Biology & Chemistry 40:2016-2020.

SALAS E., OBREGÓN M., VARGAS R., ARAYA M. 2008. Aislamiento y reproducción de hongos antagonistas a plagas del banano y plátano, mediante fermentación en sustrato sólido. CORBANA 34(61):67-94.

SÁNCHEZ O., PIZARRO K., RESTREPO M.E. 2012. Estadísticas de exportación bananera 2011. San José, Costa Rica. Corporación Bananera Nacional. 60 p.

SARAH J.L. 2000. Nematode pathogens, burrowing nematode, pp. 295-303. In: D.R. Jones (ed.). Diseases of banana, abacá and Enset. CABI Publishing, Wallingford, Oxon, UK. 76 AGRONOMÍA COSTARRICENSE Agronomía Costarricense 39(2): 61-76. ISSN:0377-9424 / 2015

SCHENCK S. 2004. Control of nematodes in tomato with Paecilomyces lilacinus strain 251. Vegetable Report 5:1-5.

SERRANO E., SANDOVAL J., POCASANGRE L., ROSALES F., DELGADO E. 2006. Importancia de los indicadores físico-químicos en la calidad del suelo para la producción sustentable de banano en Costa Rica, pp. 207-221. In: XVII Reunión Internacional ACORBAT. (2006, Santa Catarina, BR). Memoria. Santa Catarina, BR.

SHARON E., BAR-EYAL I., CHET I., HERRERA A., KLEIFELD O., SPIEGEL Y. 2001. Biological control of the root-knot nematode Meloidogyne javanica by Trichoderma harzianum. Phytopathology 91:687-693.

SIDDIQUI I.A., SHAUKAT S.S. 2004. Trichoderma harzianum enhances the production of nematicidal compounds in vitro and improves biocontrol of Meloidogyne javanica by Pseudomonas fluorescens in tomato. Letters in Applied Microbiology 38:169- 175.

SIKORA R.A., POCASANGRE L.E. 2004. New technologies to increase root health and crop production. Infomusa 13(2):25-29. SPIEGEL Y., CHET I. 1998. Evaluation of Trichoderma spp., as a biocontrol agent against soilborne fungi and plant-parasitic nematodes in Israel. Integrated Pest Management Reviews 3:169-175.

STIRLING G.R. 1991. Biological control of plant parasitic nematodes. Progress, Problems, and prospects. CAB International. 282 p.

SUAREZ B., REY M., CASTILLO P., MONTE E., LLOBELL A. 2004. Isolation and characterization of PRA1, a trypsin-like protease from the biocontrol agent Trichoderma harzianum CECT 2413 displaying nematicidal activity. Applied Microbiology Biotechnology 65:46-55.

TAYLOR L.Q., LOEGERING W.Q. 1953. Nematodes associated with root lesions in abaca. Turrialba 3(1-2):8-13. TORRES P.E. 2009. Efectividad de los agentes de combate biológico: Trichoderma spp., Paecilomyces lilacinus (Thom) Samson, Arthobotrys oligospora Dreschler y los hongos formadores de micorriza arbuscular, en el combate de Radopholus similis (Cobb) Sher. Tesis de maestría, UNA. Heredia, Costa Rica. 125 p.

TYREE M.T., PETERSON C.A., EDGINGTON L.V. 1979. A simple theory regarding ambimobility of xenobiotics with special reference to the nematicide oxamyl. Plant Physiology 63:367-374.

VAN GUNDY S., McKENRY M.V. 1977. Action of nematicides, pp. 263-283. In: J.G. Horsfall and E.G. Cowling (eds.). Plant Disease An Advanced Treatise. Vol. 1. New York, US, Academic Press.

VARGAS R., ARAYA M. 2005. Efecto de Paecilomyces lilacinus en el control de de Radopholus similis en plantas de banano (Musa AAA) establecidas en invernadero y cultivadas en áreas comerciales, p. 64. In: Primer Congreso Científico-Técnico Bananero Nacional. (2005, Guápiles, Costa Rica). Resúmenes. Guápiles, Costa Rica.

VARGAS R., ARAYA M. 2009. Efecto de la inyección de Vydate y la aplicación de Paecilomyces lilacinus y Trichoderma spp., en el control de nematodos y la producción de banano (Musa AAA) cv. Grande Naine, pp. 56-58. In: Informe anual 2008, Dirección de Investigaciones CORBANA (Corporación Bananera Nacional, Costa Rica). San José, Costa Rica.

VARGAS R., CALVO C., COLLADO M., ARAYA M. 2006. Evaluación de estrategias de combate químico de nematodos en plantaciones de banano (Musa AAA) renovadas con material in vitro. CORBANA 32(59):51-65.

VARGAS R., SALAS E., OBREGÓN M., TORRES P., ARAYA M. 2009. Efecto de la aplicación individual o en mezcla de hongos con potencial nematófago en el combate de Radopholus similis en condiciones in vitro, invernadero y campo, p. 55-56. In: Tercer Congreso Científico-Técnico Bananero Nacional. (2009, Guápiles, CR). Resúmenes. Guápiles, Costa Rica.

VARGAS R., WANG A., OBREGÓN M., ARAYA M. 2010. Evaluación de cepas de Trichoderma spp., y Paecilomyces lilacinus para el combate de nematodos en plantas de banano (Musa AAA cv. Grande Naine) en etapa de vivero. CORBANA 35-36(62):35-47.

VIGLIERCHIO D.R., MAGGENTI A.R., SCHMITT R.V., PAXMAN G.A. 1977. Nematicidal injection: targeted control of plant-parasitic nematodes of trees and vines. Journal of Nematology 9(4):307-311.

ZUM FELDE A. 2002. Screening of the endophytic fungi from banana (Musa) for antagonistic effects towards the burrowing nematode Radopholus similis (Cobb) Thorne. M.Sc. Thesis. Bonn, DE, University of Bonn. 53 p.

ZUM FELDE A., POCASANGRE L.E., SIKORA R.A. 2006. Detection of in-plant supressiveness to Radopholus similis in suckers from banana plants protected with mutualistic endophytes, p. 71. In: XXXVIII Annual Meeting ONTA. Abstracts. San José, Costa Rica.

Comments

Downloads

Download data is not yet available.