Bioestimulación radical y radiación solar en plantas de Coffea arabica L. en etapa de vivero

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.15517/am.2024.59975

Palabras clave:

algas marinas, clorofila total, micorrizas, polímeros orgánicos

Resumen

Introducción. En etapa de vivero se pueden conformar plantas de Coffea arabica L. con calidad que reduzcan los efectos estresantes después del trasplante, aumenten la eficiencia fotosintética y mantengan una tasa de crecimiento constante. Objetivo. Evaluar el efecto de bioestimulantes y radiación solar en el crecimiento y la fisiología de plantas de Coffea arabica en etapa de vivero. Materiales y métodos. Los experimentos se realizaron dentro de un microtúnel en la Benemérita Universidad Autónoma de Puebla, México, con una duración de 270 días, en los años 2018 y 2022. Se utilizó un diseño factorial en bloques con tres factores: bioestimulantes (testigo, hongos micorrízicos, algas marinas y polímeros orgánicos), radiación (81, 168, 278 y 440 μmol m-2 s-1) y variedades de Coffea arabica (Costa Rica 95, Marsellesa, Caturra Roja y Garnica). Se determinó la colonización micorrízica (CM), la proporción del sistema radical (PSR), la tasa de crecimiento (TC), la proporción de parte aérea (PPA), las clorofilas y el contenido nutricional. A los datos se les aplicó un análisis de varianza para detectar diferencias entre tratamientos. Resultados. A los 270 días después de la siembra, la variedad Marsellesa, bioestimulada con hongos micorrízicos y expuesta a una irradiancia de 168 ± 36 μmol m-2 s-1, alcanzó valores altos de CM con 36,51 % y TC con 0,175 g g-1 día. En Costa Rica 95 y Marsellesa, la bioestimulación con polímeros y una irradiancia de 440 ± 59 μmol m-2 s-1 se relacionaron significativamente (p ≤ 0,05) con incrementos de 3,08 mg g-1 PMF (peso de la materia fresca) en clorofila total. En Marsellesa, la bioestimulación con polímeros y una irradiancia de 168 ± 36 μmol m-2 s-1 resultaron en mayores contenidos de N, P, K, Ca y Mg. Conclusiones. La bioestimulación radical con hongos micorrízicos y niveles de radiación de 168 a 278 μmol m-2 s-1 propiciaron un mejor desarrollo en plantas de cafeto.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Abdelaal, K. A. A., Attia, K. A., Alamery, S. F., El-Afry, M. M., Ghazy, A. I., Tantawy, D. S., Al-Doss, A. A., El-Shawy, E.-S. E., Abu-Elsaoud, A. M., & Hafez, Y. M. (2020). Exogenous application of proline and salicylic acid can mitigate the injurious impacts of drought stress on barley plants associated with physiological and histological characters. Sustainability, 12(5), Article 1736. http://dx.doi.org/10.3390/su12051736

Aguilar-Luna, J. M., Loeza-Corte, J. M., & Díaz-López, E. (2022). Interactive effect of moisture restriction and salicylic acid on biochemical responses in Phaseolus coccineus. Revista de la Facultad de Agronomía de la Universidad del Zulia (LUZ), 39(3), Article e223940. https://doi.org/10.47280/RevFacAgron(LUZ).v39.n3.06

Carter, M. R., & Gregorich, E. G. (2008). Soil sampling and methods of analysis (2nd ed.) Taylor & Francis Group, LLC.

Chekri, R., Noël, L., Millour, S., Vastel, C., Kadar, A., Sirot, V., Leblanc, J.-C., & Guérin, T. (2012). Calcium, magnesium, sodium and potassium levels in foodstuffs from the second French total diet study. Journal of Food Composition and Analysis, 25(2), 97–107. https://doi.org/10.1016/j.jfca.2011.10.005

DaMatta, F. M., Loos, R. A., Silva, E. A., & Loureiro, M. E. (2002). Limitations to photosynthesis in Coffea canephora as a result of nitrogen and water availability. Journal of Plant Physiology, 159(9), 975–981. https://doi.org/10.1078/0176-1617-00807

De Beenhouwer, M., Aerts, R., & Honnay, O. (2013). A global meta-analysis of the biodiversity and ecosystem service benefits of coffee and cacao agroforestry. Agriculture, Ecosystems & Environment, 175, 1–7. http://dx.doi.org/10.1016/j.agee.2013.05.003

Del Aguila, K. M., Vallejos-Torres, G., Arévalo, L. A., & Becerra, A. G. (2018). Inoculación de consorcios micorrícicos arbusculares en Coffea arabica, variedad Caturra en la región San Martín. Información Tecnológica, 29(1), 137–146. https://dx.doi.org/10.4067/S0718-07642018000100137

Di Matteo, J., Rattin, J., & Di Benedetto, A. (2015). Increase of spinach growth through the use of larger plug cell volume and an exogenous BAP spray. Journal of Experimental Agriculture International, 6(6), 372–383. https://doi.org/10.9734/AJEA/2015/14979

Dubberstein, D., Partelli, F. L., Dias, J. R. M., & Espindola, M. C. (2016). Concentration and accumulation of macronutrients in leaf of coffee berries in the Amazon, Brazil. Australian Journal of Crop Science, 10(5), 701–710. https://doi.org/10.21475/ajcs.2016.10.05.p7424

Elhakem, A. H. (2019). Impact of salicylic acid application on growth, photosynthetic pigments and organic osmolytes response in Mentha arvensis under drought stress. Journal of Biological Sciences, 19(6), 372–380. https://doi.org/10.3923/jbs.2019.372.380

Encalada Córdova, M., Soto Carreño, F., & Morales Guevara, D. (2016). Crecimiento de posturas de cafeto (Coffea arabica L.) con cuatro niveles de sombra en dos condiciones edafoclimáticas de Ecuador. Cultivos Tropicales, 37(2), 72–78. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.4335.7681

Farfán Valencia, F. (2011). Las buenas prácticas agrícolas en la caficultura. En Centro Nacional de Investigaciones de Café (Ed.), Sistemas de producción de café en Colombia (pp. 275-309). Centro Nacional de Investigaciones de Café. https://www.cenicafe.org/es/documents/buenasPracticasCapitulo12.pdf

Flores, M., Urrestarazu, M., Amorós, A., & Escalona, V. (2022). High intensity and red enriched LED lights increased the growth of lettuce and endive. Italian Journal of Agronomy, 17(1), Article 1915. https://doi.org/10.4081/ija.2021.1915

Fu, Y., Li, H., Yu, J., Liu, H., Cao, Z., Manukovsky, N. S., & Liu, H. (2017). Interaction effects of light intensity and nitrogen concentration on growth, photosynthetic characteristics and quality of lettuce (Lactuca sativa L. var. Youmaicai). Scientia Horticulturae, 214, 51–57. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2016.11.020

Hernández-Acosta, E., Trejo-Aguilar, D., Ferrera-Cerrato, R., Rivera-Fernández, A., & González-Chávez, M. C. (2018). Hongos micorrízicos arbusculares en el crecimiento de café (Coffea arabica L.) variedades Garnica, Catimor, Caturra y Catuaí. Agroproductividad, 11(4), 61–67. https://revista-agroproductividad.org/index.php/agroproductividad/article/view/352/276

Hernández Córdova, N., & Soto Carreño, F. (2013). Determinación de índices de eficiencia en los cultivos de maíz y sorgo establecidos en diferentes fechas de siembra y su influencia sobre el rendimiento. Cultivos Tropicales, 34(2), 24–29. https://ediciones.inca.edu.cu/index.php/ediciones/article/view/421/pdf

Hunt, R., Causton, D. R., Shipley, B., & Askew, A. P. (2002). A modern tool for classical plant growth analysis. Annals of Botany, 90(4), 485–488. http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcf214

Husen, A. (2024). Biostimulants in plant protection and performance (1st ed.) Elsevier Academic Press.

Jezeer, R. E., Santos, M. J., Boot, R. G. A., Junginger, M., & Verweij, P. A. (2018). Effects of shade and input management on economic performance of small-scale Peruvian coffee systems. Agricultural Systems, 162, 179–190. https://doi.org/10.1016/j.agsy.2018.01.014

Lichtenthaler, H. K., & Buschmann, C. (2001). Chlorophylls and carotenoids: measurement and characterization by UV-Vis spectroscopy. In R. E. Wrolstad, T. E. Acree, H. An, E. A. Decker, M. H. Penner, D. S. Reid, S. J. Schwartz, C. F. Shoemaker, & P. Sporns, (Eds.). Current protocols in food analytical chemistry (pp. F4.3.1–F4.3.8). John Wiley and Sons, Inc. https://doi.org/10.1002/0471142913.faf0403s01

Marín-Garza, T., Gómez-Merino, F. C., Aguilar-Rivera, N., Murguía-González, J., Trejo-Téllez, L. I., Pastelín-Solano, M. C., & Castañeda-Castro, O. (2018). Variaciones en área foliar y concentraciones de clorofilas y nutrimentos esenciales en hojas de café robusta (Coffea canephora P.) durante un ciclo anual. Agroproductividad, 11(4), 36–41. https://www.revista-agroproductividad.org/index.php/agroproductividad/article/view/266/196

Montoya Restrepo, E. C., Hernández Arredondo, J. D., Unigarro Muñoz, C. A., & Flórez Ramos, C. P. (2017). Estimación del área foliar en café variedad Castillo® a libre exposición y su relación con la producción. Cenicafé, 68(1), 55–61. https://www.cenicafe.org/es/publications/5.Estimacion.pdf

Muñoz-Márquez, E., Macías-López, C., Franco-Ramírez, A., Sánchez-Chávez, E., Jiménez-Castro, J., & González-García, J. (2009). Identificación y colonización natural de hongos micorrízicos arbusculares en nogal. Terra Latinoamericana, 27(4), 355–361. https://www.terralatinoamericana.org.mx/index.php/terra/article/download/1273/1492/

Ortiz-Timoteo, V., Ordaz-Chaparro, V. M., Aldrete, A., Escamilla-Prado, E., Sánchez-Viveros, G., & López-Romero, R. M. (2018). Tratamientos pregerminativos en semillas de dos especies del género Coffea. Agroproductividad, 11(4), 68–73. https://revista-agroproductividad.org/index.php/agroproductividad/article/view/272/201

Pennisi, G., Pistillo, A., Orsini, F., Cellini, A., Spinelli, F., Nicola, S., Fernández, J. A., Crepaldi, A., Gianquinto, G., & Marcelis, L. F. M. (2020). Optimal light intensity for sustainable water and energy use in indoor cultivation of lettuce and basil under red and blue LEDs. Scientia Horticulturae, 272, Article 109508. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2020.109508

Perea Rojas, Y. C., Arias, R. M., Medel Ortiz, R., Trejo Aguilar, D., Heredia, G., & Rodríguez Yon, Y. (2018). Effects of native arbuscular mycorrhizal and phosphate-solubilizing fungi on coffee plants. Agroforestry Systems, 93, 961–972. https://doi.org/10.1007/s10457-018-0190-1

Phillips, J. M., & Hayman, D. S. (1970). Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society, 55(1), 158–161. https://doi.org/10.1016/S0007-1536(70)80110-3

Poorter, H., Lambers, H., & Evans, J. R. (2014). Trait correlation networks: a whole-plant perspective on the recently criticized leaf economic spectrum. New Phytologist, 201(2), 378–382. https://doi.org/10.1111/nph.12547

Qin, Y., Liu, X., Li, C., Chu, Q., Cheng, S., Su, L., Shao, D., Guo, X., He, Z., & Zhou, X. (2024). Effect of light intensity on celery growth and flavonoid synthesis. Frontiers in Plant Science, 14, Article 1326218. https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1326218

Reyes-Landa, D., Mercado-Mancera, G., Escamilla-Prado, E., & Robledo-Martínez, J. D. (2018). Innovaciones tecnológicas en la producción de planta de café (Coffea arabica L.). Agroproductividad, 11(4), 74–79. https://revista-agroproductividad.org/index.php/agroproductividad/article/view/273/202

Rodrigues Reis, A., Favarin, J. L., Gallo, L. A., Malavolta, E., Ferreira Moraes, M., & Lavres Junior, J. (2009). Nitrate reductase and glutamine synthetase activity in coffee leaves during fruit development. Revista Brasileira de Ciência do Solo, 33(2), 315–324. https://doi.org/10.1590/S0100-06832009000200009

Sadeghian Khalajabadi, S., & Salamanca Jiménez, A. (2015). Micronutrientes en frutos y hojas de café. Cenicafé, 66(2), 73–87. https://www.cenicafe.org/es/publications/5.Micronutrientes.pdf

Schmidt, B., Gaşpar, S., Camen, D., Ciobanu, I., & Sumălan, R. (2011). Arbuscular mycorrhizal fungi in terms of symbiosis-parasitism continuum. Communications in Agricultural and Applied Biological Sciences, 76(4), 653–659. https://typeset.io/papers/arbuscular-mycorrhizal-fungi-in-terms-of-symbiosis-4k5hwn6xou

Semedo, J. N., Rodrigues, A. P., Lidon, F. C., Pais, I. P., Marques, I., Gouveia, D., Armengaud, J., Silva, M. J., Martins, S., Semedo, M. C., Dubberstein, D., Partelli, F. L., Reboredo, F. H., Scotti-Campos, P., Ribeiro-Barros, A. I., DaMatta, F. M., & Ramalho, J. C. (2021). Intrinsic non-stomatal resilience to drought of the photosynthetic apparatus in Coffea spp. is strengthened by elevated air [CO2]. Tree Physiology, 41(5), 708–727. https://doi.org/10.1093/treephys/tpaa158

Trejo, D., Ferrera-Cerrato, R., García, R., Varela, L., Lara, L., & Alarcón, A. (2011). Efectividad de siete consorcios nativos de hongos micorrízicos arbusculares en plantas de café en condiciones de invernadero y campo. Revista Chilena de Historia Natural, 84(1), 23–31. http://dx.doi.org/10.4067/S0716-078X2011000100002

ur-Rehman, A., Safeer, M., Qamar, R., Mohsin Altaf, M., Sarwar, N., Farooq, O., Mazher Iqbal, M., & Ahmad, S. (2019). Exogenous application of salicylic acid ameliorates growth and yield of sunflower (Helianthus annuus L.) in saline soil. Agrociencia, 53(2), 207–217. https://agrociencia-colpos.org/index.php/agrociencia/article/view/1779

Zangaro, W., Vergal Rostirola, L., Bochi de Souza, P., De Almeida Alves, R., Azevedo Marques Lescano, L. E., Berbel Lírio Rondina, A., Nogueira, M. A., & Carrenho, R. (2013). Root colonization and spore abundance of arbuscular mycorrhizal fungi in distinct successional stages from an Atlantic rainforest biome in southern Brazil. Mycorrhiza, 23, 221–233. https://doi.org/10.1007/s00572-012-0464-9

Publicado

2024-11-15

Cómo citar

Aguilar-Luna, J. M., Hernández-Vargas, L., & Hernández-Ángel, R. (2024). Bioestimulación radical y radiación solar en plantas de Coffea arabica L. en etapa de vivero. Agronomía Mesoamericana, 36, 59975. https://doi.org/10.15517/am.2024.59975