Aplicación de biorreguladores para la macro-propagación del banano cv. Williams en cámara térmica.
DOI:
https://doi.org/10.15517/am.v27i2.24390Palabras clave:
musáceas, citocininas, organogénesis in vivo.Resumen
El objetivo de este trabajo fue evaluar la respuesta prolífica de cormos de banano cv. Williams a la aplicación de 6-bencilaminopurina (6-BAP) y un bioestimulante a base de extracto de algas, en condiciones de cámara térmica. En la granja experimental “La Teodomira” de la Universidad Técnica de Manabí, Ecuador, se realizó una investigación desde noviembre del 2013 a abril del 2014. Los tratamientos fueron 6-bencilaminopurina (6-BAP) en concentraciones de 0, 20, 40 y 80 mg/l, y un bioestimulante a base de extractos de algas en dosis de 0, 20, 40 y 80 ml/cormo. La bencilaminopurina fue aplicada en el cormo, y el bioestimulante fue aplicado en drench. El diseño utilizado fue bloques completos al azar con tratamiento factorial A x B, donde los factores fueron 6-BAP y el bioestimulante, los tratamientos, fueron replicados cuatro veces, para un total de 64 unidades experimentales. Se detectaron diferencias significativas (p≤0,0001) para el factor 6-BAP, donde la mayor tasa de multiplicación fue alcanzada con la concentración de 40 mg/l con 47,28 plántulas/cormo. No hubo diferencias significativas (p≥0,9167) para el bioestimulante, ni para la interacción 6-BAP x bioestimulante (p≥0,3789). Se evidenció la formación de tejido calloso a partir de los brotes de primera generación (R1). Con la concentración de 80 mg/l de 6-BAP, se observó la presencia de plántulas anormales, en mayor proporción en las que provenían de tejido callo
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Adelaja, B. 1995. Técnica de multiplicación rápida en la explotación de bananos y plátanos. Musafrica 12(8):6.
Aguilar, M., G. Reyes, y M. Acuña. 2004. Métodos alternativos de propagación de semilla agámica de plátano (Musa sp.). Serie técnica N° 1. Universidad Nacional Agraria, Managua, Nicaragua. 20 p. http://lacalera2.una.edu.ni/dowload_pdf/Guia_Num-1_Ano-2010.pdf (consultado 29 ene. 2015).
Armijos, F. 2008. Principales tecnologías generadas para el manejo del cultivo de banano, plátano y otras musáceas. Boletín Técnico No 131. Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias (INIAP), Guayaquil, ECU.
Azcón, J., y M. Talón. 2008. Fundamentos de fisiología vegetal 2 ed. McGraw-Hill – Interamericana de España, S.A.U. Madrid, ESP.
Amougou, A. 2012. Guide pratique de production de rejets de bananier plantain par la methode PIF: Manuel de formation pour les groupes de producteurs agricoles. http://www.erails.net/images/cameroon/cnopcam/cnopcaminfos/files/Bonnes%20pratiques%20PIF.pdf. (accessed 29 ene. 2015).
Alarcón, J., e Y. Jiménez. 2012. Manejo sanitario del cultivo de plátano (Musa spp): medidas para la temporada invernal. Instituto Colombiano Agropecuario (ICA), Bogotá, COL. http://www.ica.gov.co/getattachment/08fbb48d-a985-4f96-9889-0e66a461aa8b/-nbsp;Manejo-fitosanitario-del-cultivo-de platano.aspx (consultado 29 ene. 2015).
Álvarez, E., A. Pantoja, L. Gañán, y G. Ceballos. 2013a. Estado del arte y opciones de manejo del Moko y la Sigatoka negra en América Latina y el Caribe. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Cali, COL. http://www.fao.org/3/a-as124s.pdf (consultado 29 ene. 2015).
Álvarez, E., G. Ceballos, L. Cañán, D. Rodríguez, S. González, y A. Pantoja. 2013b. Producción de material de siembra limpio en el manejo de las enfermedades limitantes del plátano. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). Publicación CIAT No. 384. Cali, COL.
Bakelana, K., y Mpanda. 2000. Método de multiplicación de banano mediante pelado del rizoma. InfoMusa 9(2):26-27.
Bairu, M., W. Stirk, K. Doleţal, and J. Van Staden. 2008. The role of topolins in micropropagation and somaclonal variation of banana cultivars Williams and Grand Naine (Musa spp. AAA). Plant Cell. Tiss. Organ. Cult. 95:373-379. doi:10.1007/s11240-008-9451-4.
Bibadabi, S., S. Meon, and M. Mahmood. 2010. Study of genetic and phenotypic variability among somaclones Induced by BAP and TDZ in micropropagated shoot tips of banana (Musa spp.) using RAPD markers. J. Agri. Sci. 2:49-60. doi:10.5539/jas.v2n3p49.
Canchignia, H., M. Espinoza, G. Benavides, S. Saucedo, M. Carranza, y O. Cevallos. 2008. Propagación vegetativa de plátano y banano con la aplicación de bencilaminopurina (6-BAP) y ácido indolacetico (AIA). Cienc. Tecnol. 1:11-15.
Colmenares, M., y C. Giménez. 2007. Inducción de yemas múltiples en Musa (AAB) plátano “Hartón Gigante” con inmersión temporal. Ciencia 15:331-340.
Dayarani, M., M. Dhanarajan, S. Uma, and P. Durai. 2013. Macro propagation for regeneration of wild bananas (Musa spp.). Advanced BioTech. 12(12):16-17.
Díaz, F., J. Rivera, y L. Durán. 2007. Cómo proteger de las plagas del suelo los cormos-semilla de plátano y banano. Fundación Hondureña de Investigación Agrícola (FHIA), La Lima, Cortez, HON. http://www.fhia.org.hn/dowloads/proteccion_veg_pdfs/proteccion_de_plagas_enfermedades_cormos_de_banano_platano.pdf (consultado 29 ene. 2015).
Dharaneeswara, D., D. Suvarna, and D. Muralidhra. 2014. Effects of 6-benzyl amino purine (6-BAP) on in vitro shoot multiplication of Grand Naine (Musa sp.). Int. J. Adv. Biotec. Res. 5:36-42.
Dzomeku, D., S. Darkey, J. Wünsche, and R. Bam. 2014. Response of selected local plantain cultivars to PIBS (Plants issus de bourgeons secondaires) technique. J. Plant Develop. 21:117-123.
Falah, M., T. Wajima, D. Yasutake, Y. Sago, and M. Kitano. 2010. Responses of root uptake to high temperature of tomato plants (Lycopersicon esculentum Mill.) in soil-less culture. J. Agri. Tech. 6:543-558.
García, L., P. Pérez, I. Bermúdez, P. Orellana, N. Veitía, L. García, Y. Padrón, y C. Romero. 2002. Desarrollo de yemas adventicias en banano (Musa sp.) cv. Gran Enano (AAA). Biotecnol. Vegetal 2:47-49.
García, L., P. Pérez, I. Bermúdez, P. Orellana, N. Veitía, L. García, Y. Padrón, y C. Romero. 2006. Nuevo protocolo para la rápida inducción de yemas adventicias y la regeneración de plantas en banano cv. ‘Grande naine’ (Musa AAA). Biotecnol. Vegetal 6:15-21.
Gómez, R., A. Gerth, L. García, M. Freire, B. Pérez, e I. Herrera. 1995. Obtención de callos y regeneración de plantas en diferentes clones de plátano y banano. Agronomía Trop. 54:233-246.
Giménez, C., E. de García, N. de Enrech, and I. Blanca. 2001. Somaclonal variation in banana: cytogenetic and molecular characterization of the somaclonal variant CIEN BTA-03. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 37:217-222. doi:10.1007/s11627-001-0038-6.
Giri, A. 2012. Effect of acute heat stress on nutrient uptake by plant roots. Thesis of MSc degree in Biology, University of Toledo. Toledo, USA.
Hamilton, K. 1965. Reproduction of banana from adventitious buds. Trop. Agric. 42:69-73.
Hanumantharaya, M., M. Kerutagi, B. Patil, V. Kanamadi, and B. Bankar. 2009. Comparative economic analysis of tissue culture banana and sucker propagated banana production in Karnataka. Karnataka J. Agric. Sci. 22: 810-815.
Hao, H., C. Jiang, S. Zhang, Y. Tang, and L. Shi. 2012. Enhanced thermal-tolerance of photosystem II by elevating root zone temperature in Prunus mira Koehne seedlings. Plant Soil 353:367-378. doi:10.1007/s11104-011-1037-y.
Héctor, E., A. Torres, S. Algoe, S. Cabañas, y A. López. 2007. Propagación in vitro del plátano macho (Musa sp. AAB) clon sobrino con los bioestimulantes cubanos BB-6 y Biostan como sustitutos de los reguladores del crecimiento. Cultivos Trop. 28(1):13-18.
Huang, B., S. Rachmilevitch, and J. Xu. 2012. Root carbon and protein metabolism associated with heat tolerance. J. Exp Bot. 63:3455-3465. doi:10.1093/jxb/ers003.
Juárez, P., R. Bugarín, R. Castro, A. Sanchéz, E. Cruz, C. Juárez, G. Alejo, y R. Balois. 2011. Estructuras utilizadas en agricultura protegida. Rev. Fuente. 3(8):21-27.
Kwa, M. 2003. Activation de bourgeons latents et utilisation de fragments de tige du bananier pour la propagation en masse de plants en conditions horticoles in vivo. Fruits 58:315-328. doi:10.1051/fruits: 2003018.
Kindimba, G., and T. Msogoya. 2014. Effect of benzylaminopurine on in vivo multiplication of French plantain (Musa spp. AAB) cv. ‘Itoke sege’. J. Appl. Biosci. 72:6086-6090. doi:10.4314/jab.v74i1.1.
Langford, E., B. Abram, N. Daruni, W. Jens, and S. Choochad. 2012. Macropropagation of Bananas for Pig Fodder in Northern Thailand. In: K. Stahr et al., editors, International Scientific Conference on “Sustainable Land Use and Rural Development in Mountain Areas”. University of Hohenheim, Stuttgart, GER. 16-18 april 2012. p. 201-202.
Lassois, L., P. Lepoivre, R. Swennen, I. van den Houwe, and B. Panis. 2013. Thermotherapy, chemotherapy, and meristem culture in banana. In: M. Lambardi et al., editors, Protocols for micropropagation of selected economically-important horticultural plants, methods in molecular biology. Springer Science+Business Media, New York, USA. p. 419-433.
López, Z. 2010. Organogénesis directa de novo en Musa AAA “Enano Gigante” y “FHIA-23”. Tesis MSc en Fruticultura, Colegio de Postgraduados, Montecillo, MEX.
Manzur, D. 2001. Propagación masiva in situ del híbrido de plátano FHIA-20 utilizando bencilaminopurina. Infomusa 10(1):3-4.
Markham, J., D. Bremer, C. Boyer, and K. Schroeder. 2011. Effect of container color on substrate temperatures and growth of red maple and redbud. Hort. Sci. 46:721-726.
Mathers, H. 2003. Summary of temperature stress issues in nursery containers and current methods of protection. Hort. Technol. 13:617-623.
Mathers, H., S. Lowe, C. Scagel, D. Struve, and L. Case. 2007. Abiotic factors influencing root growth of woody nursery plants in containers. Hort. Techol.17:151-162.
Mugo, S., A. Bunde, M. Korir, and J. Mudaki. 2013. Factors influencing tissue culture banana output and its impact on income in Nyamusi division, Nyamira North district, Kenya. Int. J. Sci. Basic Appl. Res. 2:1-24.
Müller, D. and O. Leyser. 2011. Auxin, cytokinin and the control of shoot branching. Ann. Bot. 107:1203-1212. doi:10.1093/aob/mcr069.
McMichael, B. and Burke, J. 2002. Temperature effects on root growth. In: A. Eshel, and T. Beeckman, editors, Plant roots: The hidden half. 3rd ed. NY, USA. p. 717-728.
Msogoya, T., and J. Mwakisitu. 2014. Effect of thidiazuron on in vivo shoot proliferation of popular banana (Musa spp. L) cultivars in Tanzania. J. Appl. Biosci. 81:7214 – 7220. doi:10.4314/jab.v81i1.1.
Njau, N., M. Mwangi, R. Gathu, J. Mbaka, and R. Muasya. 2011a. Banana weevil (Cosmopolites sordidus) reduces availability of corms for seedling production through macropropagation technology. J. Anim. Plant Sci. 12:1537-1542.
Njau, N., M. Mwangi, R K. Gathu, R. Muasya, and J. Mbaka. 2011b. Macropropagation technique for production of healthy banana seedlings. In: J. Tenywa et al., editors. African Crop Science Conference Proceedings. Vol 10. African Crop Science Society, Maputo, MOZ. 10-13 October 2011. p. 469-472.
Ngo-Samnick, E. 2011. Improved plantain production. The Pro-Agro collection. Engineers without Borders, Cameroon (ISF Cameroun) and the Technical Centre for Agricultural and Rural Co-operation (CTA), Douala-Bassa, CMR. http://www.anancy.net/documents/file_en/livret.pdf (accessed 20 dic. 2014).
Njukwe, E., A. Tenkouano, D. Amah, K. Sadik, M. Perez, M. Nyine, and T. Dubois. 2007. Training manual. Macro-propagation of banana and plantain. USAID/IITA/CRS, Kampala, Uganda. 23 p. http://www.ina.or.id/knoma-hpsp/fruit/HPSP-09-Bahandang-Macropropagation-Banana-Manual.pdf (accessed 20 dic. 2014).
Ohemeng, L. 2013. In vivo stimulation of axillary bud initiation, growth and development of plantain (Musa AAB.) using coconut water and indole-3-acetic acid. Thesis PhD degree in Crop Science. University of Ghana, Legon, HA.
Osei, J. 2006. Rapid field multiplication of plantains using benzyl adenine or coconut water-treated split corms. Ghana J. Agri. Sci. 39:189-202.
doi:10.4314/gjas.v39i2.2142.
Panattoni, A., A. Luvisi, and E. Triolo. 2013. Elimination of viruses in plants: twenty years of progress. Spanish J. Agric. Res. 11: 173-188. doi:10.5424/sjar/2013111-3201.
Pereira, L., C. Ramírez, J. Pereira, e A. Alvarenga. 2001. Efeitos do BAP e do TDZ na produção de mudas de bananeira-’Maçã’ através da propagação rápida “in vivo”. Rev. Bras. Frutic. 23:230-233. doi:10.1590/S0100-29452001000200005.
Pernisová, E., P. Klima, J. Horák, M. Válková, J. Malbeck, P. Soucek, P. Reichman, K. Hoyerová, J. Dubuvá, J. Friml, E. Zazimalová, and J. Hejatko. 2009. Cytokinins modulate auxin-induced organogenesis in plants via regulation of the auxin efflux. PNAS 106(9):3609-3614. doi:10.1073_pnas.0811539106.
PRO ECUADOR (Instituto de Promoción de Exportaciones e Inversiones). 2013. Análisis del sector bananero. Quito, ECU.
Roels, S., M. Escalona, I. Cejas, C. Noceda, R. Rodriguez, M. Canal, J. Sandoval, and P. Debergh. 2005. Optimization of plantain (Musa AAB) micropropagation by temporary immersion system. Plant Cell. Tiss. Org. 82:57-66. doi:10.1007/s11240-004-6746-y.
Rodríguez, D., G. Ceballos, J. Mejía, E. Álvarez, y O. Lugo. 2013. Construcción, implementación y estandarización de cámara térmica para producción de semilla de plátano libre enfermedades. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Cali, COL.
Salisbury, F., C. Ross. 2000. Fisiología vegetal. Parte 3: Desarrollo de las plantas y fisiología ambiental. Thomson/ParanInfo, S. A. Madrid, ESP.
SAS Institute Inc. 2004. SAS/STAT® 9.1 User´s Guide. SAS Institute Inc. Cary, NC, USA.
Serrano, Z. 2011. Guía práctica del empleo de materiales plásticos en agricultura y ganadería. Colección Técnicas Agrícolas, Madrid, ESP.
Singh, H., R. Selvarajan, S. Uma, and J. Karihaloo. 2011. Micropropagation for production of quality banana planting material in Asia-Pacific. Asia-Pacific Consortium on Agricultural Biotechnology (APCoAB), New Delhi, IND. http://www.apcoab.org/uploads/files/1298295339pub_banana.pdf (consultado 20 dic. 2014).
Soto, M. 2006. Renovación de plantaciones bananeras, un negocio sostenible, mediante el uso de umbrales de productividad, fijados por agricultura de precisión. En: E. Soprano et al., editores, Memorias de XVII reunión internacional de ACORBAT, vol. 1. ACORBAT/ACAFRUTA, Joinville, Brasil. p. 178-189.
Soto, M. 2008. Banano, técnicas de producción, manejo poscosecha y comercialización. 3 ed. Litografía e Imprenta LIL, S.A. San José, CRC.
Skoog, M. 1957. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro. Symp. Soc. Exp. Biol. 54:118-130.
Taiz, L., and E. Zeiger. 2010. Plant physiology. 5th ed. Sinauer Associates, Inc. Sunderland, MA, USA.
Todorova, D., T. Genkov, I. Vaseva, V. Alexieva, E. Karanov, A. Smith, and M. Hall. 2005. Effect of temperature stress on the endogenous cytokinin content in Arabidopsis thaliana (L.) Heynh plants. Acta Physiol. Plant. 27:13-18.
Tomekpe, K., M. Kwa, B. Dzomeku, and J. Ganry. 2011. CARBAP and innovation on the plantain banana in Western and Central Africa. Int. J. Agr Sustain. 9:264-273. doi:10.3763/ijas.2010.0565.
Tremont, O., J. Mogollón, y G. Martínez. 2006. Inmersión y riego con vermicompost líquido de secciones de cormos del clon Dominico-Hartón (Musa AAB). Manejo Integrado de Plagas y Agroecología 77:57-61.
Vargas, A. 2015. Evaluación de cultivares y materiales de siembra en plátanos del tipo falso cuerno bajo un manejo intensivo de plantación. Cultivos Tropicales 36(2):72-82.
Vargas, A., and M. Araya. 2010. Effect of banana (Musa AAA, cv. Williams, Cavendish subgroup) planting material on plant growth and yield over eight crop cycles. Tree Forestry Sci. Biotech. 4(Special Issue 2):17-25.
Vasane, S., A. Patil, and R. Kothari. 2009. Phenotypic characters of various types identified in laboratory, primary and secondary hardening in tissue cultured banana var. Grand Naine. Indian J. Biotech. 9:178-186.
Ying-Hua, Su., L. Yu-Bo, and Z. Xian-Sheng. 2011. Auxin-cytokinin interaction regulates meristem development. Mol. Plant. 4:616-625. doi:10.1093/mp/ssr007.
Wahid, A., S. Gelani, M. Ashraf, and M. Foolad. 2007. Heat tolerance in plants: an overview. Environ. Expert. Bot. 61:199-223. doi:10.1016/j.envexpbot.2007.05.011.
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