Uso de marcadores moleculares en el mejoramiento del frijol

Autores/as

  • James Kelly Mich. State Univ.. E. Lansing
  • Lucía Afanado Mich. State Univ.. E. Lansing
  • Seott Haley South Dakota State Univ.. Brookings.
  • Phillip Miklas Tropical Agricultural Research Station.

DOI:

https://doi.org/10.15517/am.v5i0.24844

Resumen

Los métodos de mejoramiento para piramidar genes de resistencia a la enfermedades comprenden generalmente cruzas, retrocruzas, y cruzas de prueba encaminadas a verificar la presencia de una combinación deseada de estos genes en la progenie resultante. La acción epistática entre los genes de resistencia, sumada a limitaciones en el muestreo, y al trabajo que representan las cruzas de prueba, inciden finalmente en que no toda la progenie tenga la combinación deseada de genes. El procedimiento anterior vendría a ser más eficiente. si añadimos a esto el uso de marcadores moleculares ligados estrechamente alos genes de resistencia, seleccionando así indirectamente y en ausencia del patógeno, por la presencia de aquellos genes responsables por la resistencia. La presencia de este marcador no sería enmascarada por ninguna acción epistática, evento generalmente observado entre los genes de resistencia. Nuestro grupo de mejoramiento de frijol en Michigan State University, ha marcado exitosamente los genes Up-2, Ur-3, y el bloque de genes B-190, los cuales confieren resistencia a la roya del frijol. Este logro ha sido posible mediante el uso de marcadores moleculares del tipo RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA), y poblaciones desarrolladas por retrocruzas. Estos marcadores moleculares nos ofrecen la oportunidad de piramidar de una manera más eficiente los genes de resistencia a la roya en genotipos específicos. Esta estrategia de mejoramiento incrementaría la durabilidad de estos genes.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

AFANADOR, L. K.; HALEY, S. D.; KELLY, J. D. 1993. Adoption of a "mini-prep" DNA extraction method for RAPD marker analysis in common bean. Ann. Rep. Bean Improv. Coop. 36: 10-11.

BASSETT, M. J. 1992. Characterization and inheritance of four induced leaf mutants in common bean. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 117:512-514.

HALEY, S. D.; MIKLAS, P. N.; STAVELY, J. R; BYRUM, J.; KELL Y, J. D. 1993. Identification of RAPD markers linked to a major rust resistant gene block in common bean. Theor. Appl. Genet, 86: 505-512.

HALEY, S. D.; AFANADOR, L. K. ; MIKLAS, P. N. ; STA VELY, J. R.; KELLY, J. D. . 1994. Heterogeneous inbred populations are useful as sources of near-isogenic lines for RAPD marker localization. Theor. Appl. Genet (Accepted).

KOENIG, R.; GEPTS, P. 1989. Allozyme diversity in wild Phaseolus vulgaris: further evidence for two major centers of diversity. Theor. Appl. Genet. 78:809-817.

MICHEL MORE, R. W.; PARAN, I.; KESSELI, R V. 1991. Identification of markers linked to disease resistance genes by bulked segregant analysis: a rapid method to detect markers in specific agronomic regions using segregating populations. Proc. Natl. Acad. Sci.(U.S.A) 88:9828-9832.

MIKLAS, P. N., STA VEL Y, J. R ; KELL Y, J. D. 1993. Identification and potential use of a molecular marker for rust resistance in common bean. Theor. Appl. Genet. 86: 745-749.

NODARI, R. O.; KOINANGE, E. M. R.; KELLY, J. D.; GEPTS, P. 1992. Towards an integrated linkage map of common bean. I. Development of genomic DNA probes and levels ofrestriction fragment length polymorphism. Theor. Appl. Genet. 84: 186-192.

SAGHAI-MAROOF, M. A., SOLIMAN, K. M., JORGENSEN, R. A.; ALLARD, R.W. 1984. Ribosomal DNA spacer- Iength polymorphism in barley: Mendelian inheritance, chromosomal location, and population dinamics. Proc. Natl. Acad. Sci (U.S.A) 81: 8014-8018.

SPRECHER, S. L. 1988. Allozyme differentiation between gene pools in common bean (Phaseolus vulgaris L.) with special reference to Malawian germplasm. Ph.D. Thesis. Michigan State Univ.

STAVELY, J. R 1984. Pathogenic specialization in Uromyces phaseoli in the United States and rust resistance in beans. Plant Dis. 68:95-99.

STAVELY, J.R;STEADMAN,J.R.; MCMILLAN,R. T. 1989. New pathogenic variability in Uromyces appendiculatus in North America. Plant Dis. 73: 428-432.

STAVELY, J. R; KELLY,1. D.; GRAFTON, K. F. 1991. Release of seven erect, short vine navy bean germplasm lines, Bemidak- Rust Resistant-1,-2,-3,-4,-5,-6, and -7. ARSUSDA Germplasm Release Notice.

USDA-SEA, AG. EXP. STN. UNIV. PUERTO RICO. 1979, The release of four black bean cultivars: B-128, B-190, B-351, and 2B-5-1. ARS-USDA Germplasm Release Notice.

VALLEJOS, C. E.; SAKIY AMA, N. S.; CHASE, C. D. 1992. Amolecular marker-based linkage map of Phaseolus vulgaris L. Genetics 131:733-740.

WILLIAMS, J. G. K.; KUBELIK, K. J.; LIVAK, J. A; RAFALSKI; TINGEY, S. V. 1990. DNA polymorphism amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. Nucleic Acid Res.18:6531-6535.

Descargas

Publicado

2016-06-15

Cómo citar

Kelly, J., Afanado, L., Haley, S., & Miklas, P. (2016). Uso de marcadores moleculares en el mejoramiento del frijol. Agronomía Mesoamericana, 5, 1–7. https://doi.org/10.15517/am.v5i0.24844