Una técnica alternativa de inoculación de Colletotrichum gloeosporioides en mango para la detección temprana de la tolerancia a la antracnosis

Autores/as

  • Abraham Monteon Ojeda Colegio de Postgraduados http://orcid.org/0000-0002-5697-3106
  • José Sergio Sandoval Islas Colegio de Postgraduados, Mexico
  • José Antonio Mora Aguilera Colegio de Postgraduados, Mexico
  • Carlos De Leon García De Alba Colegio de Postgraduados
  • Amado Peréz Rodríguez Colegio de Postgraduados
  • Alfonso Vasquez Lopez Instituto Politécnico Nacional

DOI:

https://doi.org/10.15517/ma.v29i2.30424

Palabras clave:

conidios, esporas, Mangifera indica, técnicas de aislamiento.

Resumen

La importancia de contar con una técnica que permita una expresión eficiente de síntomas de antracnosis se basa en la diferenciación temprana de cultivares y a la optimización de recursos genéticos, materiales y financieros. El objetivo de esta investigación fue generar una técnica de inoculación alternativa para Colletotrichum gloeosporioides componentes más relevantes como la virulencia de los aislamientos, la densidad de conidios, la deposición de inóculo en hojas y el uso de surfactantes. El estudio se realizó en Iguala, México, durante los ciclos de producción 2015-2016. C. gloeosporioides fue caracterizado biológica y culturalmente. Los aislamientos monospóricos Gro y Sin, fueron obtenidos de hojas, flores, frutos y ramas con síntomas típicos de antracnosis procedentes de huertos comerciales de mango ubicados en los estados de Guerrero y Sinaloa, México. Estos aislamientos presentaron un crecimiento micelial de 2,2, y 2,1 cm de diámetro por día, densidad de esporas de 4,3x106, 3,9x106 conidios/ml, germinación de 27 y 26%, virulencia, con un período de incubación de 4,5 y 4,1 días después de la inoculación, 90 y 92% de incidencia y severidad de 3,2 y 3,5 cm de diámetro. Los valores de incidencia y severidad más altos y los períodos de incubación más bajos se obtuvieron con el aislamiento Gro (1x105 conidios/ml), en un medio de monolaurato de polioxietileno- 20-sorbitán sobre la superficie abaxial de hojas jóvenes desprendidas, de 15-20 días de desarrollo, con el empleo de una brocha de pelo suave e incubado en condiciones de oscuridad. Esta técnica de inoculación permitió la expresión óptima de virulencia de C. gloeosporioides en hojas de mango y podría incorporarse como una herramienta en la diferenciación temprana de la tolerancia y susceptibilidad entre cultivares.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Biografía del autor/a

Abraham Monteon Ojeda, Colegio de Postgraduados

Enferemdades de frutales

Citas

Acosta, M., D. Nieto-Ángel, J.L. Domínguez-Álvarez, y J.L. Delgadillo-Sánchez. 2001. Calidad y tolerancia en frutos de papaya (Carica papaya L.) a la inoculación del hongo Colletotrichum gloeosporioides Penz., en postcosecha. Rev. Chapingo Ser. Hort. 7:119-130.

Ainsworth, G.C., F.K. Sparrow, and A.S. Sussman. 1973.The fungi. An advanced treatise. Academic Press Inc., NY, USA.

Alemu, K., A. Ayalew, and K. Weldetsadi. 2014. Evaluation of antifungal activity of botanicals for postharvest management of mango anthracnose (Colletotrichum gloeosporioides). Int. J. Life Sci. 8:1-6. doi:10.3126/ijls.v8i1.9957

Arauz, L.F. 2000. Mango anthracnose: economic impact and current options for integrated management. Plant Dis. 84:600-611. doi:10.1094/PDIS.2000.84.6.600

Barnett, H.L., and B.B. Hunter. 1998. Illustrated genera of imperfect fungi. 4th ed. APS Press, MN, USA.

Bailey, J.A., and M.J. Jeger. 1992. Colletotrichum: biology, pathology and control. CAB Internacional Wallingford, GBR.

Biggs, A.R., and S.S. Miller. 2001. Relative susceptibility of selected apple cultivars to Colletotrichum acutatum. Plant Dis. 85:657-660. doi:10.1094/PDIS.2001.85.6.657

Carreon, S.L., K.A. Balderas, M.A. Wong, D.R. Rosas, y E.G. Fentanes. 2010. Biofungicidas para el control de la antracnosis del mango: logrando frutos de alta calidad internacional para mercados exigentes. Claridades Agropecu. 20(208):28-37.

Denoyes-Rothan, B.G., C.D. Guérin, B. Smith, D. Minz, M. Maymon, and S. Freeman. 2003. Genetic diversity and pathogenic variability among isolates of Colletotrichum species from strawberry. Phytopathology 93:219-228. doi:10.1094/PHYTO.2003.93.2.219.

Doster, M.A., and W.C. Schnathorst. 1992. Comparative susceptibility of various grapevine cultivars to the powdery mildew fungus Uncinula necator. Am. J. Enol. Viticult. 36(2):101-104.

Espinosa, A.J., S.J. Arias, P.H. Rico, S.M. Miranda, y C.X. Chávez. 2004. Dinámica del daño y control de la antracnosis Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) en mango de Michoacán. INIFAP, MEX.

Estrada-Valencia, M.N., P.E. Vélez-Arango, y E.C. Montoya-Restrepo. 1997. Caracterización de cultivos monospóricos del hongo Beauveria bassiana. CENICAFÉ 48(4):217-224. FAO. 2016. Food and agriculture data. FAO. http://faostat3.fao.org/browse/Q/*/E (accessed Jun. 24 2017).

Frias, G.A., L.H. Purdy, and R.A. Schmidt. 1995. An inoculation method for evaluating resistance of cacao to Crinipellis perniciosa. Plant Dis. 79:787-791. doi:10.1094/PD-79-0787

Gutiérrez-Alonso, O., J.G. Gutiérrez, D.A. Nieto, D.O. Téliz, E.M. Zavaleta, F.S. Delgadillo, y H.H. Vaquera. 2003. Evaluación de resistencia a benomil, thiabendazol y azoxystrobin para el control de antracnosis (Colletotrichum gloeosporioides Penz.) en frutos de guayaba (Psidium guajava L.) en postcosecha. Rev. Mex. Fitopatol. 21:228-232.

Gutiérrez-Alonso, J.G., D. Nieto-Ángel, D. Téliz-Ortiz, E. Zavaleta-Mejía, H. Vaquera-Huerta, T. Martínez-Damián, y F. Delgadillo-Sánchez. 2001. Características de crecimiento, germinación, esporulación y patogenicidad de aislamientos de Colletotrichum gloeosporioides Penz. obtenidos de frutos de mango (Mangifera indica L.). Rev. Mex. Fitopatol. 19:90-93.

Hernández. A., J. Pineda, A.G. Vera, E. Gil, H. Nass, y V. Barrientos. 2005. Técnica de inoculación rápida y eficiente para la evaluación de materiales de maíz ante “Rhizoctonia solani Kühn”. Bioagro 17:93-98.

Kuc, J., and S. Richmond. 1977. Aspects of the protection of cucumber against Colletotrichum lagenarium by Colletotrichum lagenarium. Phytopathology 67:533-536.

Montesinos-Matías, R., Viniegra-González, G., Alatorre-Rosas, R., and O. Loera. 2011. Relationship between virulence and enzymatic profiles in the cuticle of Tenebrio molitor by 2-deoxy-D-glucose-resistant mutants of Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. World J. Microbiol. Biotechnol. 27:2095-2102. doi:10.1007/s11274-011-0672-z

Moral, J.K., R. De-Oliveira, and A. Trapero. 2009. Elucidation of the disease cycle of olive anthracnose caused by Colletotrichum acutatum. Phytopathology 99:548-556. doi:10.1094/PHYTO-99-5-0548.

Moral, J.K., and A. Trapero. 2009. Assessing the susceptibility of olive cultivars to anthracnose caused by Colletotrichum acutatum. Plant Dis. 93:1028-1036. doi:10.1094/PDIS-93-10-1028

Nelson, B., W.G. Lima, J.M. Tovar-Pedraza, S.J. Michereff, and M. Câmara. 2014. Comparative epidemiology of Colletotrichum species from mango in northeastern Brazil. Eur. J. Plant Pathol. 141:679-688. doi:10.1007/s10658-014-0570-y

Paéz, A.R. 1997. Respuesta de cultivares de mango (Mangifera indica L.) a la antracnosis en la Costa Atlántica colombiana. Rev. CORPOICA 2(1):45-53. doi:10.21930/rcta.vol2_num1_art:162

Ploetz, R.C., and O. Prakash. 2000. Foliar, floral and soilborne diseases. In: E.R. Litz, editor, The mango: botany, production and uses. CAB International, London, GBR. p. 281-285

Prusky, D. 1994. Mango-Anthracnosis. In: R.C. Ploetz et al., editors, Compendium of tropical fruit diseases. APS Press, St. Paul, MN, USA. p. 88-92

Prusky, D., I. Kobiler, I. Miyara, and N. Alkan. 2009. Fruit diseases. In: R.E. Litz, editor, 2nd ed. The mango: botany, production and uses, CAB International, Wallingford, GBR.

Rojas-Martínez, R.I., E. Zavaleta-Mejía, D. Nieto-Ángel, and M. Acosta-Ramos. 2008. Virulence and genetic variation of isolates of Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Penz. and Sacc. on mango (Mangifera indica L.) cv. Haden. Rev. Mex. Fitopatol. 26:21-26.

SAS Institute Inc. 2012. Base SAS® 9.3 Procedures guide: statistical procedures. 3th ed. SAS Institute Inc., Cary, NC, USA.

Sauceda-Acosta, C.P., G.A. Lugo-García, H.E. Villaseñor-Mir, L. Partida-Ruvalcaba, y Á. Reyes-Olivas. 2015. Un método preciso para medir severidad de roya de la hoja (Puccinia triticina Eriksson) en trigo. Rev. Fitotec. Mex. 38:427-434.

Sinha, P., R. Prajneshu, and A. Varma. 2002. Growth models for powdery mildew development of mango. Ann. Plant Prot. Sci. 10:84-87.

Stintzi, A., T. Heitza, V. Prasadb, S. Wiedemann-Merdinoglu, S. Kauffmanna, P. Geoffroya, M. Legranda, and B. Fritiga. 1993. Plant ‘pathogenesis-related’ proteins and their role in defense against pathogens. Biochimie 75:687-706. doi:10.1016/0300-9084(93)90100-7

Than, P.P., R. Jeewon, K.D. Hyde, S. Pongsupasamit, O. Mongkolporn, and P.W. Taylor. 2008. Characterization and pathogenicity of Colletotrichum species associated with anthracnose on chilli (Capsicum spp.) in Thailand. Plant Pathol. 57:562-572. doi:10.1111/j.1365-3059.2007.01782.x

Tu, J.C. 1986. A detached leaf technique for screening beans (Phaseolus vulgaris L.) in vitro against anthracnose (Colletotrichum lindemuthianum). Can. J. Plant Sci. 66:805-809. doi:10.4141/cjps86-100

Willocquet, L., D. Colombet, M. Rougier, J. Fargues, and M. Clerjeau. 1996. Effects of radiation, especially ultraviolet B, on conidial germination and mycelial growth of grape powdery mildew. Eur. J. Plant Pathol. 102:441-449. doi:10.1007/BF01877138

Publicado

2018-05-01

Cómo citar

Monteon Ojeda, A., Sandoval Islas, J. S., Mora Aguilera, J. A., De Leon García De Alba, C., Peréz Rodríguez, A., & Vasquez Lopez, A. (2018). Una técnica alternativa de inoculación de Colletotrichum gloeosporioides en mango para la detección temprana de la tolerancia a la antracnosis. Agronomía Mesoamericana, 29(2), 263–274. https://doi.org/10.15517/ma.v29i2.30424