Aspectos epidemiológicos de Cryptosporidium spp. en terneros del estado Táchira en Venezuela

Autores/as

  • Carlos David Moreno-Manresa Universidad Nacional Experimental de Táchira, Venezuela
  • Angela Arellano-Semidey Boeringer Ingelheim, CA. Chuao. Caracas 1061 Venezuela
  • Cindy Martin-Pérez Hospital for Children Headquarters. Tampa Florida. 33607. USA

DOI:

https://doi.org/10.15517/ma.v29i3.31054

Palabras clave:

bovinos, epidemiología, criptosporidiosis, infecciones por protozoos.

Resumen

Los procesos diarreicos son los más comúnmente involucrados en las pérdidas por muertes o disminución de crecimiento, y se dan en etapas tempranas de la vida de los animales de producción. En Venezuela, particularmente en el estado Táchira, se ha determinado en terneros la presencia de protozoarios del género Cryptosporidium, pero no se ha evaluado suficientemente su relación con manifestaciones clínicas de enfermedad gastrointestinal. El objetivo de este trabajo fue evaluar la epidemiología de Cryptosporidium spp. en los terneros de rebaños del estado Táchira y su relación con manifestaciones clínicas de enfermedad digestiva. Se muestrearon 338 terneros aleatoriamente durante el año 2008. Las variables epidemiológicas estudiadas fueron: a) la edad en meses, tomada de los registros existentes en las unidades de producción; b) el sexo del animal; c) la zona del estado Táchira (norte o sur); d) presencia de signos evidentes de diarrea; y e) positividad o negatividad a criptosporidios al examen coprológico. Del total, un 27% mostró positividad a Cryptosporidium spp. por la técnica de Zielh Neelsen modificado. El estudio sugiere que este género de protozoarios constituye un factor de riesgo para la presentación de diarreas en terneros desde el nacimiento al destete en el estado Táchira (OR >1; p<0,05); donde el 18,8% de los casos de diarreas indiferenciadas pueden guardar relación con la presencia del parásito (p<0,05). Las infecciones resultaron menos comunes en los terneros mayores (OR <1; p<0,01), sin embargo, la edad no actúa como un factor determinante para la presentación de diarrea en animales ya infectados. El sexo no se presentó como factor de riesgo para la infección por Cryptosporidium spp.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Aldeyarbi, H.M., N.M. Abu, and P. Karanis. 2016. Cryptosporidium and cryptosporidiosis: the African perspective. Environ. Sci. Pollut. Res. Int. 23:13811-13821. doi:10.1007/s11356-6746-6

Alvarez, H.J., F. Mujica, y R. Meléndez. 2011. Prevalencia y viabilidad de ooquistes de Cryptosporidium spp. en becerras de fincas lecheras del estado Lara, Venezuela. Gaceta Cienc. Vet. 16:5-11.

Andrade, L., R. Fernández, G. González, y S. Rivera. 1986. Criptosporidiosis en la bolsa de Fabricio en pollos de engorde. En: Federación Nacional de Médicos Veterinarios, editor, Memorias de las IV Jornadas Nacionales Veterinarias. Federación Nacional de Médicos Veterinarios, Caracas, VEN. p. 105-106.

Angus, W. 1987. Criptosporidiosis in domestic animals and human. In Practice 9(2):47-50. doi:10.11336/inprect.9.2.47

Aranguren-Méndez, J., R. Román-Bravo, Y. Villasmil-Ontiveros, y F. Yánez. 2007. Evaluación genética de la ganadería mestiza doble propósito en Venezuela. Arch. Latinoam. Prod. Anim. 15:241-250.

Bhatia, B. 2000. Textbook of veterinary protozoology. Indian Council of Agricultural Research, New Delhi, IND.

Brar, A., P. Sood, N. Kaur, P. Singla, L., Sandhu, B. Gupta, and M. Chandra. 2017. Periurban outbreaks of bovine calf scours in Northern India caused by Cryptosporidium in association with other enteropathogens. Epid. Infect. 145:2717-2726. doi:10.1017/S0950268817001224

Castellanos, L., J. Pérez, y F. Urdaneta. 2013. Estructuras generales para registro contable de costos en sistemas de producción doble propósito en dos zonas del estado Táchira. Rev. Fac. Agron. (LUZ) 30:632-653.

Cho, Y., and K.J. Yoon. 2014. An overview of calf diarrhea-infectious etiology, diagnosis, and intervention. J. Vet. Sci.15:1-17. doi:10.4142/jvs.2014.15.1.1

Contreras, J.A. 2000. Enfermedades de los bovinos IV: diagnóstico tratamiento y control. Editorial Rapilit, Lara, VEN.

Del-Coco, V.F., M.A. Córdoba, G. Bilbao, A. Pinto, J.A. Basualdo, R. Fayer, and M. Santín. 2014. Cryptosporidium parvum GP60 subtypes in dairy cattle from Buenos Aires, Argentina. Res. Vet. Sci. 96:311-314. doi:10.1016/j.rvsc.2013.10.010

Díaz, A., L. Ramírez-Iglesia, O. Hernández, y N. Montilla. 2004. Cryptosporidium spp. en becerros neonatos de ganadería lechera y de doble propósito del estado Trujillo. Venezuela. Zoot. Trop. 22(2):125-132.

Fayer, R. 1994. Effect of high temperature on infectivity of Cryptosporidium parvum oocysts in water. Appl. Environ. Microbiol. 60:2732-2735.

Fayer, R. 2010. Taxonomy and species delimitation in Cryptosporidium. Exp. Parasitol. 124:90-97. doi:10.1016/j.expara.2009.03.005

Fayer, R., and B.L. Ungar. 1986. Cryptosporidium spp. and criptosporidiosis. Microbiol. Rev. 50:458-483.

González, L., y C. Moreno. 2003. Identificación de algunos patógenos causantes de diarrea en terneros en fincas de la Zona Norte del estado Táchira. Rev. Cient. UNET 15(2):1-8.

Hayes, E., T. Matte, and T. O’Brien. 1989. Large community outbreak of criptosporidiosis due to contamination of a filtered water supply. N. Engl. J. Med. 320:1372-1376. doi:10.1056/NEJM198905253202103

Leal, F., L. Avilán, y E. Valderrama. 1999. Áreas potenciales para el desarrollo del cacao en Venezuela. Rev. Agroalimen. 5(8):39-45.

Llorca, J., C. Fariñas-Álvarez, y M. Delgado-Rodríguez. 2001. Fracción atribuible poblacional: cálculo e interpretación. Gaceta Sanitaria 15:61-67.doi:10.1016/S0213-9111(01)71519-1

Mariné-Oliveira, G.F., M.C. do-Couto, M. de-Freitas-Lima, and T.C. do-Bomfim. 2016. Mussels (Perna perna) as bioindicator of environmental contamination by Cryptosporidium species with zoonotic potential. Int. J. Parasitol. Parasites Wildl. 5:28-33. doi:10.1016/j.ijppaw.2016.01.004

Maurya, P.S., R. Garg, P.S. Banerjee, S. Kumar, R.L. Rakesh, K. Kundu, and O.K. Raina. 2013. Genotyping of Cryptosporidium species reveals prevalence of zoonotic C. parvum subtype in bovine calves of north India. Indian J. Anim. Sci. 83:1018-1023.

Morgan, J. 1991. Epidemiology, diagnosis and control of undifferentiated calf diarrhoea. In Practice 12(1):17-20. doi:10.1136/inpract.12.1.17

Murphy, G., und U. Andresen. 2000. Neuere aspekte zur beurteilung der eignung antidiarrhoischer Diätetika für das kalb. Der Praktische Tierartzt 81(3):246-257.

Orellana, J.J., J.S. Kaufman, and P. Pino. 2013. Interaction, synergy and antagonism in prospective epidemiological studies. Rev. Peru. Med. Exp. Salud Pública 30:687-690.

Pérez-Schael.J., Y. Boher, L. Mata, M. Pérez, and F.J. Tapia. 1985. Criptosporidiosis in Venezuelan children with acute diarrhea. J. Trop. Med. Hyg. 34:721-722. doi:10.4269/ajmh.1985.34.721

Rekha, K.M.H., G.C. Puttalakshmamma, and P.E. D’Souza. 2016. Comparison of different diagnostic techniques for the detection of cryptosporidiosis in bovines. Vet. World 9:211-215. doi:10.14202/vetworld.2016.211-215.

Ryan, U., R. Fayer, and L. Xiao. 2014. Cryptosporidium species in humans and animals: current understanding and research needs. Parasitology 141:1667-1685. doi:10.1017/S0031182014001085

SASA (Servicio Autónomo de Sanidad Agropecuaria). 2005. Población bovina según municipio y grupo etario segundo ciclo de vacunación antiaftosa año 2004. SASA, Estado Táchira, VEN.

Schiaffino, A., M. Rodríguez, M.I. Pasarin, E. Regidor, C. Borrell, and E. Fernández. 2003. Odds ratio or prevalence ratio? Their use in cross-sectional studies. Gaceta Sanitaria 17:70-74. doi:10.1016/S0213-9111(03)71694-X.

Silva-León, G.A. 2010. Tipos y subtipos climáticos de Venezuela. Universidad de Los Andes, Mérida, VEN.

Surumay, Q., y C. Alfaro. 2000. Cryptosporidium spp., en bovinos jóvenes de fincas de la región oriental de Venezuela. Rev. Invest. Clín. 41:245-250.

Surumay, Q., and L. Pote. 1999. Concurrent infections of Cryptosporidium and Giardia in dairy farms Mississippi State, USA. Rev. Cientif. 9:519-523.

Surumay, Q., y Y. Sandoval. 2000. Cryptosporidium spp. en bovinos jóvenes de fincas del estado Zulia, Venezuela. Vet. Trop. 25:73-80.

Vargas-Villalobos, O.A., J.A. Elizondo-Salazar, y L. Noguera-Solera. 2014. Factores relacionados con la falla en transferencia de inmunidad pasiva en terneras y terneros de lechería en la región central norte de Costa Rica. Nutr. Anim. Trop. 8:68-79.

Wang, R., H. Wang, Y. Sun, L. Zhang, F. Jian, M. Qi, C. Ning, and L. Xiao. 2011. Characteristics of cryptosporidium transmission in preweaned dairy cattle in Henan, China. J. Clin. Microbiol. 49:1077-1082. doi:10.1128/JCM02194-10

Wayne, S., A.H. Meek, y P. Willeberg. 1997. Epidemiología veterinaria: principios y métodos. Acribia, Zaragoza, ESP.

Wayne, S., A.H. Meek, y P. Willeberg. 1997. Epidemiología veterinaria: principios y métodos. Acribia, Zaragoza, ESP.

Publicado

2018-09-01

Cómo citar

Moreno-Manresa, C. D., Arellano-Semidey, A., & Martin-Pérez, C. (2018). Aspectos epidemiológicos de Cryptosporidium spp. en terneros del estado Táchira en Venezuela. Agronomía Mesoamericana, 29(3), 507–517. https://doi.org/10.15517/ma.v29i3.31054