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Resumen
La esquistosomiasis es una enfermedad crónica y debilitante que constituye una problemática de salud pública a nivel mundial. Debido a que Schistosoma mansoni está ampliamente distribuida y a que es el causante de la esquistosomiasis intestinal representa una gran amenaza. Biomphalaria es el hospedero intermedio y obligatorio para el estado larval, presenta una amplia distribución geográfica e infecta al ser humano. El objetivo fue identificar las proteínas responsables del efecto de compatibilidad en caracoles Biomphalaria alexandrina de distintos estadios a través de la diferenciación del total de proteínas en ellos. La investigación se llevó a cabo con caracoles de diferentes edades y antecedentes genéticos. Se estudiaron cuatro subgrupos (F1) de la progenie de caracoles susceptibles y resistentes reproducidos asexualmente (F0). Las tasas de infección de estos subgrupos (juvenil susceptible, adulto susceptible, juvenil resistente, adulto resistente) fueron 90 %, 75 %, 40 % y 0 %, respectivamente. Con la electroforesis en gel de poliacrilamida en presencia de dodecilsulfato sódico (SDS-PAGE) se evaluaron las diferencias en la expresión proteica entre los caracoles juveniles y adultos de los distintos subgrupos. Se calculó el coeficiente de similitud de Dice para determinar el porcentaje de bandas compartidas entre los subgrupos experimentales. Los resultados mostraron que la combinación de similitudes entre la edad y el estado de compatibilidad de los caracoles genera el mayor coeficiente de similitud seguido por el de la combinación de similitudes tanto de la edad como del origen genético aunque varían en el estado de compatibilidad. Por otra parte, las diferencias en los antecedentes genéticos, la edad y el estado de compatibilidad generan el índice de similitud más bajo. También se encontró que el antecedente genético en caracoles juveniles es importante en la determinación de su compatibilidad, mientras que el sistema de defensa interno es el que determina el nivel de compatibilidad en adultos. En conclusión, los resultados de este trabajo resaltan la importancia de la edad del caracol en conjunto con la genética y la defensa interna para determinar la compatibilidad de B. alexandrina/S.mansoni. Se recomienda realizar futuros trabajos así como una mayor caracterización de las bandas proteicas compartidas entre los subgrupos estudiados para esclarecer su papel en la relación hospedero-parásito.Citas
Abdel-Hamid, Z.A., Rawi, S.M., & Arafa, A.F. (2006). Identification of genetic marker associated with the resistance to Schistosoma mansoni infection using random amplified polymorphic DNA analysis. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 101, 863-868.
Abou-El-Naga, I.F., Eissa, M.M., Mossallam, S.F., & Abd El-Halim, S.I. (2010). Inheritance of Schistosoma mansoni infection incompatibility in Biomphalaria alexandrina snails. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 105, 149–154.
Abou-El-Naga, I.F., & Radwan, E.H. (2012). Defense response of susceptible and resistant Biomphalaria alexandrina snails against Schistosoma mansoni infection. Revista de Biolog´ıa Tropical, 60 (3), 1195–1204.
Abou-El-Naga, I.F., El-Nassery, S.M.F., Allam, S.R., & Mady, R.F.M. (2014). In vitro interactions between the defense systems of resistant and susceptible Biomphalaria alexandrina and sporocysts of Schistosoma mansoni. Veterinary Parasitology, 205, 712–716.
Abou-El-Naga, I.F., Sadaka, H.A., Amer, E.I., Diab, I.H., & Khedr, S.I.A. (2015). Impact of Biomphalaria alexandrina snails` age on transmission of Schistosoma mansoni: Modulation of the genetic outcome and the internal defense system of the snail. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 110 (5), 585-595.
Bayne, C.J. (2009). Successful parasitism of vector snail Biomphalaria glabrata by the human blood fluke (trematode) Schistosoma mansoni: a 2009 assessment. Molecular and Biochemical Parasitology, 165 (1), 8-18.
Chernin, E., & Dunavan, C.A. (1962). The influence of host-parasite dispersion upon the capacity of Shistosoma mansoni miracidia to infect Australorbis glabratus. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 11, 455-471.
Coelho, P.M., Carvalho, O.S., Andrade, Z.A., Martins-Sousa, R.L., Rosa, F.M., & Barbosa. L. (2004). Biomphalaria tenagophila/Schistosoma mansoni interaction: premises for a new approach to biological control of schistosomiasis. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 99 (1), 109-111.
Corrêa, L.R., & Paraense, W.L. (1971). Susceptibility of Biomphalaria amazonica to infection with two strains of Schistosoma mansoni. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo, 13(6), 387-390.
Dice ,L.R. (1945). Measures of the amount of ecological association between species. Ecology, 26, 297-302.
El-Dafrawy, S.M., El-Din, A.T., & Hamid, H.A. (2006). Electrophoretic patterns of protein fractionations in hemolymph and tissues of Biomphalaria alexandrina and Bulinus truncatus during course of schistosome infection. Journal of the Egyptian Society of Parasitology, 36(3), 795-807.
El-Nassery, S.M., Abou-El-Naga, I.F., Allam, S.R., Shaat, E.A., & Mady, R.F. (2013). Genetic variation between Biomphalaria alexandrina snails susceptible and resistant to Schistosoma mansoni infection. Biomed Reearchs Inernational, 160320.doi: 10.1155/2013/160320.
Lewis, F.A., Patterson, C.N., & Gizywarz, C. (2002). Parasite susceptibility phenotypes of F1 Biomphalaria glabrata progeny derived from interbreeding of Schistosoma mansoni resistant and susceptible snails. Parasitology Research, 89, 98-101.
Mohamed, A.H. (2005). Characterization of surface lectins binding and SDS-PAGE protein patterns of Biomphalaria alexandrina haemocytes infected with Schistosoma mansoni. Journal of the Egyptian Society of Parasitology, 35(2), 615-630.
Morgan, J.A., Dejong, R.J., Snyder, S.D., Mkoji, G.M., & Loker, E.S. (2001). Schistosoma mansoni and Biomphalaria: past history and future trends. Parasitology, 123(l), 211-228.
Niemann, G.M., & Lewis, F.A. (1990). Schistosoma mansoni: influence of Biomphalaria glabrata size on susceptibility to infection and resultant cercarial production. Experimental Parasitology, 70, 286–292.
Raghavan, N., Miller, A.N., Gardner, M., Fitz-Gerald, P.C., Kerlavage, A.R, Johnston, D.A.,… Knight, M. (2003). Comparative gene analysis of Biomphalaria glabrata hemocytes pre- and post-exposure to miracidia of Schistosoma mansoni. Molecular and Biochemical Parasitology, 126(2), 181-91.
Richards, C.S., & Merritt, J.R. (1972). Genetic factors in the susceptibility of juvenile Biomphalaria glabrata to Schistosoma mansoni infection. The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene, 21, 425-434.
Richards, C.S., & Shade, P.C. (1987). The genetic variation of compatibility in Biomphalaria glabrata and Schistosoma mansoni. Journal of Parasitology, 73(6), 1146–1151.
Richards, C.S., Knight, M., & Lewis, F.A. (1992). Genetic of Biomphalaria glabrata and its effect on the outcome of Schistosoma mansoni infection. Parasitology Today, 8 (5), 171-174.
Rosa, F.M., Godard, A.L.B., Azevedo, V., & Coelho, P.M.Z. (2005). Biomphalaria tenagophila: dominant character of the resistance to Schistosoma mansoni in descendants of cross breedings between resistant (Taim, RS) and susceptible (Joinville, SC) strains. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 100(1), 19–23.
Steinmann, P., Keiser, J., Bos, R., Tanner, M., & Utzinger, J. (2006). Schistosomiasis and water resources development: systematic review, meta-analysis, and estimates of people at risk. The Lancet of Infectious Diseases, 6(7), 411–425.
W.H.O. (2015). Schistosomiasis Fact Sheet. No.115. (Updated 2015) http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs115/en/.
Zanotti-Magalhães, E.M., Magalhães, L.A., Carcalho, J.F. (1997). Relationship between pathogenicity of Schistosoma mansoni in mice and the susceptibility of the vector mollusk. IV-Infectiousness of miracidia. Revista de Saúde Pública, 31(5), 488-494.
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