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La distribución de los ovocitos en y entre los lóbulos ováricos de Lachnolaimus maximus (Perciformes: Labridae) es generalmente homogénea
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Nóh Quiñones, V. E., Torres Villegas, J. R., Brulé, T., Montero Muñoz, J. L., & Valdez Montiel, U. F. (2017). La distribución de los ovocitos en y entre los lóbulos ováricos de Lachnolaimus maximus (Perciformes: Labridae) es generalmente homogénea. Revista De Biología Tropical, 65(1), 293–303. https://doi.org/10.15517/rbt.v65i1.22995

Resumen

Para el estudio de la reproducción de los peces es necesario, un conocimiento previo sobre la distribución de los ovocitos en el ovario, así como estimaciones cuantitativas del número de ovocitos para estimar la fecundidad por lote o anual. Una distribución heterogénea exige tener un protocolo de muestreo estandarizado para prevenir sesgos en las estimaciones, mientras que una distribución homogénea permite utilizar muestras de cualquier parte de las gónadas sin riesgo de sesgo. Nosotros estudiamos el patrón de distribución de los ovocitos de la población de la doncella de pluma Lachnolaimus maximus del sur del Golfo de México. Para este propósito, 23 hembras maduras fueron seleccionadas de un total de 47 individuos que presentaron ovocitos observables a simple vista en los ovarios. Estas hembras fueron clasificadas según su fase o sub-fase reproductiva (desarrollo temprano-DT, desarrollo-D, aptitud para desovar-AD y desove activo-DA). Seis secciones histológicas fueron realizadas de las regiones anterior, media y posterior de los lóbulos derecho e izquierdo del ovario de cada individuo. Un procesamiento digital de imágenes (AxioVision e Image ProPlus) fue utilizado para estimar la densidad de los ovocitos, en diferentes estadios de desarrollo, por unidad de área. Las frecuencias de distribución de los ovocitos fueron analizadas entre regiones de un mismo lóbulo y entre lóbulos de cada ovario por medio de tablas de contingencia. Este análisis involucró la aplicación de la prueba de bondad de ajuste del χ2 de Pearson y de la prueba de G replicada en el caso de observar una distribución heterogénea. La mayoría de las 23 hembras analizadas presentó una distribución homogénea de los diferentes estadios de ovocito, en cualquier lóbulo considerado. En el lóbulo ovárico izquierdo, la distribución de los ovocitos fue similar en las tres regiones muestreadas, en cualquier fase o sub-fase de las hembras. En el lóbulo ovárico derecho, las frecuencias de los ovocitos fueron semejantes para las hembras en fase y sub-fases de DT, D y DA; sin embargo, durante la sub-fase de AD, una heterogeneidad en el desarrollo de los ovocitos en vitelogénesis terciaria-Vtg3 fue observada, especialmente en las muestras de las regiones media y posterior de este lóbulo. Las hembras en sub-fase de DA son usualmente utilizadas para estimar la fecundidad por lote en las especies de peces como L. maximus, la cual presenta un desarrollo asincrónico de los ovocitos y realiza desoves sucesivos por lote. Debido al patrón de distribución homogéneo de los ovocitos en y entre los lóbulos ováricos de las hembras en sub-fase de DA, no se requiere estandarizar un protocolo de muestreo histológico de las gónadas para estimar la fecundidad por lote de la especie. Sin embargo, debido a la distribución heterogénea de los ovocitos en Vtg3 en el lóbulo ovárico derecho de las hembras en fase de DA, es preferible tomar sistemáticamente secciones de cualquier región del lóbulo ovárico izquierdo cuando se realiza un estudio que incluye todo los aspectos reproductivos de la especie.

https://doi.org/10.15517/rbt.v65i1.22995
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Citas

Baglin, Jr., R. E. (1982). Reproductive biology of western Atlantic bluefin tuna. Fishery Bulletin, 80, 121-134.

Brown-Peterson, N., Thomas, P., & Arnold, C. (1988). Reproductive biology of the spotted seatrout, Cynoscion nebulosus, in south Texas. Fishery Bulletin, 86, 373-388.

Brown-Peterson, N., Wyanski, D., Saborido-Rey, F., Macewicz, B., & Lowerre-Barbieri, S. (2011). A standardized terminology for describing reproductive development in fishes. Marine and Coastal Fisheries: Dynamics, Management, and Ecosystem Science, 3(1), 52-70.

Carpenter, K. E. (2002). The living marine resources of the Western Central Atlantic. Volume 3: Bony fishes part 2 (Opistognathidae to Molidae), sea turtles and marine mammals. FAO Species Identification Guide for Fishery Purposes and American Society of ichthyologists and Herpetologists Special Publication No.5. FAO, Rome.

Claro, R., García-Cagide, A., & Fernández de Alaiza, R. (1989). Características biológicas del pez perro, Lachnolaimus maximus (Walbaum), en el Golfo de Batabanó, Cuba. Revista Investigaciones del Mar, Cuba, 10(3), 239-252.

Colin, P. L. (1982). Spawning and larval development of the hogfish, Lachnolaimus maximus (Pisces: Labridae). Fishery Bulletin, 4, 853-862.

Collins, A. B., & McBride, R. S. (2014). Variations in reproductive potential between nearshore and offshore spawning contingents of hogfish in the eastern Gulf of Mexico. Fisheries Management and Ecology, 1-12.

Davis, J. C. (1976). Biology of the hogfish, Lachnolaimus maximus (Walbaum), in the Florida Keys (Master dissertation). University of Miami., Coral Gables, FL.

Di Rienzo, J. A., Casanoves, F., Balzarini, M. G., Gonzalez, L., Tablada, M., & Robledo, C. W. InfoStat version. (2013). Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina. Recuperado de: http://www.infostat.com.ar.

Gabe, M. (1968). Techniques histologiques. Masson, Paris. 1113.

Hainfellner P., de Souza, T.G., Nascimento, T. S. R., Freitas, G. A., & Batlouni, S. R. (2011). Heterogeneous distribution of oocytes in the ovaries of Prochilodus Lineatus. Indian Journal of Science and Technology. Proceedings of 9th International Symposium on Reproductive Physiology of Fish. Cochin India, 4, 111-112.

IUCN (International Union for Conservation of Nature and Natural Resources). (2016). The IUCN Red List of Threatened Species. Version 2015.4. Available: http://www.iucnredlist.org. (25 January 2016).

Kennedy, J., Witthames, P. R., & Nash, R. D. M. (2007). The concept of fecundity regulation in plaice (Pleuronectes platessa) tested on three Irish Sea spawning populations. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Canada, 64, 587–601.

Klibansky, N., & Juanes, F. (2008). Procedures for efficiently producing high-quality fecundity data on a small budget. Fisheries Research, 89, 84-89.

Lee C. F., Liu, K. M., Su, W. C., & Wu, C. C. (2005). Reproductive biology of the common ponyfish Leiognathus equulus in the south-western waters off Taiwan. Fisheries Science, 71, 551-562.

Liao, Y. Y., & Chang, Y. H. (2011). Reproductive Biology of Needlefish Tylosurus acus melanotus in Waters around Hsiao-Liu-Chiu Island, Southwestern Taiwan. Zoological Studies, 50(3), 296-308.

Lowerre-Barbieri, S. K., N., Henderson., J., Llopiz., S., Walters., J., Bickford, & Muller, R. (2009). Defining a spawning population (spotted seatrout Cynoscion nebulosus) over temporal, spatial, and demographic scales. Marine Ecology Progress Series, 394, 231-245.

Ma, Y., Kjesbu, O.S., & Jirgensen, T. (1998). Effects of ration on the maturation and fecundity in captive Atlantic herring (Clupea harengus). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, Canada, 55, 900-908.

Matić-Skoko, S., Kraljević, M., & Dulčić, J. (2004). Fecundity of blotched picarel, Spicara maena L. (Teleostei: Centracanthidae), in the Eastern central Adriatic Sea. Acta Adraiatica, 45(2), 155-162.

McElroy, D. W., Wuenschel, M. J., Press, Y. K., Towle, E. K., & McBride, R. S. (2013). Differences in female individual reproductive potential among three stocks of winter flounder, Pseudopleuronectes americanus. Journal of Sea Research, 75, 52-61.

McBride, R. S., Johnson, M., Bullock, L., & Stengard, F. (2001). Preliminary observations on the sexual development of hogfish, (Pisces: Labridae). Gulf and Caribbean Fishery Institute, 52, 98-102.

McBride, R. S., & Murphy, M. D. (2003). Current and potential yield per recruit of hogfish, Lachnolaimus maximus, in Florida. Proceedings of the Gulf and Caribbean Fishery Institute, 54, 513-525.

McBride, R. S., & Johnson, M. R. (2007). Sexual development and reproductive seasonality of hogfish (Labridae: Lachnolaimus maximus), and hermaphroditic reef fish. Journal of Fish Biology, 71, 1270-1292.

McBride, R. S., & Richardson, A. K. (2007). Evidence of size-selective fishing mortality from an age and growth study of hogfish (Labridae: Lachnolaimus maximus), a hermaphroditic reef fish. Bulletin of Marine Science, 80, 401-417.

McBride, R. S., Thurman, P. E., & Bullock, L. H. (2008). Regional variations of hogfish (Lachnolaimus maximus) life history: consequences for spawning biomass and egg production models. Journal of Northwest Atlantic Fishery Science, 41, 1-12.

Mexicano-Cíntora G., Leonce-Valencia, C. O., Salas, S., & Vega-Cendejas, M. E. (2007). Recursos pesqueros de Yucatán: fichas técnicas y referencias bibliográficas. CINVESTAV-IPN, Mérida, Yucatán, México.

Muñoz, R. C., Burton, M. L., Brennan K. J., & Parker, O. (2010). Reproduction, habitat utilization, y movements of hogfish (Lachnolaimus maximus) in the Florida keys, U.S.A.: Comparisons from fished versus unfished habitats. Bulletin of Marine Science, 86(1), 93-116.

Murua, H., Kraus G., Saborido-Rey, F., Witthames, P., Thorsen, A., & Junquera, S. (2003). Procedures to estimate fecundity of marine fish species in relation to their reproductive strategy. Journal of Northwest Atlantic Fishery Science, 33, 33-54.

Nichol, D. G., & Acuna, E. I. (2001). Annual and batch fecundities of yellowfin sole, Limanda aspera, in the Eastern Bering Sea. Fishery Bulletin, 99, 108-122.

Parker, R. O. (2000). Courtship in hogfish, Lachnolaimus maximus, and other behavior of reef fishes off Beaufort, North Carolina. The journal of the Elisha Mitchell Scientific Society, 116(3), 260-261.

Pertusa, G. (2003). Técnicas de análisis de imagen aplicaciones en biología. Universidad de Valencia., Valencia, España.348.

Reñones, O., Grau, A., Mas, X., Riera, F., & Saborido-Rey, F. (2010). Reproductive pattern of an exploited dusky grouper Epinephelus marginatus (Lowe 1834) (Pisces: Serranidae) population in the western Mediterranean. Scientia Marina, Barcelona (Spain), 74(3), 523-537.

Robinson, M. P., & Prince, J. S. (2003). Morphology of the sperm of two wrasses, Thalassoma Bifasciatum and Lachnolaimus Maximus (Labridae, Perciformes). Bulletin of Marine Science, 72(1), 247-252.

Sequeira V., Neves A., Paiva, R. B., Vieira, A. R., & Gordo, L. S. (2012). Is the fecundity type of the zygoparous Fish species Helicolenus Dactylopterus determinate or indeterminate? Vie et Milieu Life and Environment, 62(1), 37-42.

Sokal, R. R., & Rohlf, J. (1995). Biometry. The principles and practices of statistics in biological research (3rd Ed.). New York: W.H. Freeman and Company.

Tricas, T. C., & Hiramoto, J. T. (1989). Sexual differentiation, gonad development, and spawning seasonality of the Hawaiian butterflyfish, Chaetodon multicinctus. Environmental Biology of Fishes, 25, 111-124.

Wallace, R. A., & Selman, K. (1981). Cellular and Dynamic Aspects of Oocyte Growth in Teleost. Symposium on Developmental Biology of Fishes presented at the Annual Meeting of the American Society of Zoologist. Tampa Florida, 21, 325-343.

Weng, J. S., Liu K. M., Lee S. C., & Tsai, W. S. (2005). Reproductive Biology of the Blue Sprat Spratelloides gracilis in the Waters around Penghu, Central Taiwan Strait. Zoological Studies, 44(4), 475-486.

Witthames, P. R., & Greer Walker, M. (1995). Determinacy of fecundity and oocyte atresia in sole (Solea solea) from the Channel, the North Sea and the Irish Sea. Aquatic Living Resources, 8, 91–109.

Witthames, P. R., Thorsen, A., Murua, H., Saborido-Rey, F., Greenwood, L. N., Dominguez, R.,…Kjesbu, O.S. (2009). Advances in methods for determining fecundity: application of the new methods to some marine fishes. Fishery Bulletin, 107, 148-164.

Wu, C. C., Su, W. C., Liu, K. M., Weng, J. S., & Wu, L. J. (2012). Reproductive Biology of the Japanese butterfish, Psenopsis anomala, in the waters off southwestern Taiwan. Journal of Applied Ichthyology, Blackwell Verlag, Berlin, 28, 209-216.

Yang, J. L., Chen, L. H., & Hu, T. J. (2013). Maturity and spawning of painted lizardfish, Trachinocephalus myops (Bloch and Schneider, 1801) in the southeastern China Sea. Journal of Applied Ichthyology, 29, 1050-1055.

Yuen, H. S. H. (1955). Maturity and fecundity of bigeye tuna in the Pacific. Special Scientific Report: Fisheries No. 150, United States of Department of the Interior, Fish and Widlife Service, Washington, 1-30.

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