Resumen
En el estudio de algunos factores relacionados con la adaptación natural de la rata blanca al Toxoplasma gondii (cepa RH), se encontró que soportaron a 3 x 107 taquizoitos inoculados s .c. o i.p. y que su susceptibilidad fue dependiente de la edad, ya fue la sobrevivencia de animales con 1 o 5 días de edad inoculados con 104 o 10 organismos fue más baja que en animales de 10 y 15 días. Toxoplasmas que estuvieron en contacto con un lisado de las células peritoneales de la rata blanca perdieron siempre su viabilidad ya que no infectaron ratones blancos. El sobrenadante sólo inhibió al parásito en pocos casos, por todo 10 cual el factor inhibidor es probablemente endógeno en las células peritoneales. El exudado de animales con 5 días de infección mostró el efecto más notorio. Después de 10 días la acción contra el toxoplasma disminuyó y casi desapareció en los animales con 15 días de infección. La edad y la acción de los macrófagos parecen ser algunos de los factores importantes en la capacidad natural de la rata blanca a soportar infecciones tan violentas con toxoplasma como lo son las inoculaciones s.p. y s.c. de taquizoitos de la cepa RH.Citas
Anderson, S.E., & J.S. Remington. 1974. Effect of normal and activated human macrophages on Toxoplasma gondii. J. Exp. Med., 139: 1154-1174.
Borges, J.S., & W.D. Johnson. 1975. Inhibition of multiplication of Toxoplasma gondii b y human monocytes exposed to T-lymphocyte products. J. Exp. Med., 141: 483-496.
Cline, MJ., R.I. Lehrer, M.C. Territo & D.W. Golde. 1978. Monocytes and macrophages: Functions and diseases. Ann. 1nt. Med., 88: 78-88.
Frenkel, J.K. 1953. Host, strain and treatment variation as factors in the pathogenesis of toxoplasmosis. Amer. J. Trop. Med. Hyg., 2: 390-415.
Harboe, A., &. S. Erichsen. 1954. Toxoplasmosis in chickens 3. Attempts to provoke a systemic disease in chickens by infection with a chicken strain and a human strain of toxoplasma. Acta. Path. Microbiol. Scand., 35: 495-502.
Hill, A.B. 1966. PrincipIes of medical statistics. 8th ed. Oxford University Press, New York p. 143-151.
Hoff, R.L. & J.K. Frenkel. 1974. Cell mediated immunity against Besnoitia and Toxoplasma in specifically and cross immunized hamsters and in cultures. J. Exp. Med., 139: 560-580.
Jacobs, L. 1956. Propagation, morphology and biology of Toxoplasma. Ann. N.Y. Acad. Sci., 64: 154-179.
Klebanoff, SJ. Myeloperoxidase halide-hydrogen peroxide antibacterial systern. J . Bacteriol., 95: 2131-2138.
Lainson, R. 1955. Toxoplasrnosis in England II. Variation factors in the pathogenesis of Toxoplasma infections: the sudden increase in virulence of a strain after passage in rnultirnarnrnate rats and canaries. Ann. Trop. Med. Parasit., 49: 384-416.
Lewis, W.P., & E.K. Markel. 1958. Adquisition of immunity to toxoplasmosis by the newborn rato Exp. Parasit., 7: 463-467.
Lindberg, R.E., & J.K. Frenkel. 1977. Cellular immunity to Toxoplasma and Besnoitia in hamsters : specificity and the effects of cortisol. lnfect. lmmun., 15: 855-862.
Perrin, T.L., GD. Brighrnan, & E.G. Pickens. 1943. Toxoplasmosis in wild rats. I. Inf. Dis., 72: 91-96.
Remington, J.S., J.L. Krahenbuhl, & J.W. Mendenhall. 1972. A role for activated macrophages in resistance to infection with Toxoplasma. Infec. Immun., 6: 829-834.
Ruchman, T., & J.C. Fowler 1951. Localization and persistance of Toxoplasma in tissues of experimentally infected white rats. Proc. Soc. Exptl. Biol. Med., 76 : 793-796.
Sabin, A.B., & H.A. Feldman. 1948. Dyes as microchemical indicators of a new immunity phenomenon affecting a protozoon parasite (Toxoplasma). Science, 108: 660-663.
Shirahata, T., K. Shimizu, & N. Suzuki. 1976. Effect of immune lyrnphocyte products and serum antibody on the multiplication of Toxoplasma in murine peritoneal macrophages. Z . Parasitenk, 49: 11-23.
Comentarios
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Derechos de autor 1981 Revista de Biología Tropical