Palabras clave
uestro genético no invasivo; especie en peligro de extinción; región control D-loop; Lago de Izabal; Costa Atlántica de Guatemala; planes de manejo de conservación.
Cómo citar
Resumen
Introducción: Las poblaciones pequeñas corren el riesgo de perder variabilidad genética mucho más rápido que una población de mayor tamaño; disminuyendo, así mismo, su capacidad de adaptarse ante cambios ambientales. Una pequeña población de la especie en peligro de extinción el manatí antillano (Trichechus manatus manatus) ha sido identificada en Guatemala.
Objetivo: Este estudio explora la diversidad genética del manatí antillano en Guatemala mediante el análisis de haplotipos de la región de control del ADN mitocondrial en los dos hábitats más importantes identificados para la especie, Bahía La Graciosa, un bahía costera y Bocas del Polochic, un humedal costero, ambos localizados en el departamento de Izabal.
Métodos: Las muestras genéticas se colectaron utilizando técnicas de muestreo no invasivas o mínimamente invasivas: raspado de tejido epidérmico, recolección de heces y recolección de tejido extraído de cadáveres. Se usaron extracciones de ADN, amplificación de ADN médiate la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y secuenciación de la región control D-loop.
Resultados: Se obtuvieron un total de siete secuencias de ADN mitocondrial de 36 muestras recolectadas. Cuatro haplotipos fueron identificados, A01, A03, A04 y J01. Ningún otro país centroamericano ha reportado esta cantidad de haplotipos en una población de manatíes y es la primera vez que se reporta el haplotipo A01 para la región. La población de manatíes guatemaltecos comprende al menos dos linajes genéticos, el linaje Florida/Antillas Mayores (haplotipos A01, A03 y A04) y el linaje mesoamericano (J01).
Conclusión: Son necesarios más estudios, con el uso de marcadores nucleares, para comprender la dinámica poblacional entre Bahía La Graciosa y Bocas del Polochic y para poder identificar el número de unidades de manejo presentes en el país: además, se debe establecer el grado de relación con la población de Belice para coordinar mejor los esfuerzos de conservación.
Citas
Alvarez-Aleman, A., Hunter, M., Frazer, T. K., Powell, J. A., Garcia Alfonso, E., & Austin, J. D. (2022). The first assessment of the genetic diversity and structure of the endangered West Indian manatee in Cuba. Genetica, 12, 327–341. https://doi.org/10.1007/s10709-022-00172-8
Caballero, S., Ortiz-Giral, M. C., Bohorquez, L., Lozano Mojica, J. D., Caicedo-Herrera, D., Arévalo-González, K., & Mignucci-Giannoni, A. A. (2021). Mitochondrial genetic diversity, population structure and detection of Antillean and Amazonian manatees in Colombia: new areas and new techniques. Frontiers in Genetics, 12, 726916. https://doi.org/10.3389/fgene.2021.726916
Carney, S. L., Bolen, E. E., Barton, S. L., Scolardi, K. M., Englund, C. C., Tringali, M. D., & Reynolds III, J. R. (2007). A minimally invasive method of field sampling for genetic analyses of the Florida Manatee (Trichechus manatus latirostris). Marine Mammal Science, 23, 967–975. https://doi.org/10.1111/j.1748-7692.2007.00155.x
Castelblanco-Martínez, D. N., Alvarez-Aleman, A., Torres, R., Teague, A. L., Barton, S. L., Rood, K. A., Ramos, E. A., & Mignucci-Giannoni, A. A. (2021). First documentation of long-distance travel by a Florida manatee to the Mexican Caribbean. Ethology Ecology and Evolution, 34, 545–556. https://doi.org/10.1080/03949370.2021.1967457
Díaz-Ferguson, E., Hunter, M., & Guzman, H. M. (2017). Genetic composition and connectivity of the Antillean Manatee (Trichechus manatus manatus) in Panama. Aquatic Mammals, 43, 378–383.
García-Rodríguez, A. I., Bowen, M., Domning, D. P., Mignucci-Giannoni, A. A., Marmontel, M., Montoya-Ospina, R. A., Morales-Vela, B., Rudin, M., Bonde, R. K., & McGuire, P. M. (1998). Phylogeny of West Indian manatee (Trichechus manatus): how many populations and how many taxa? Molecular Ecology, 9, 1137–1149. https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.1998.00430.x
Höss, M., & Pääbo, S. (1993). DNA extraction from Pleistocene bones by a silica-based purification method. Nucleic Acids Research, 21, 3913–3914. https://doi.org/10.1093/nar/21.16.3913
Hunter, M. E, Auil-Gomez, N. E., Tucker, K. P., Bonde, R. K., Powell, J., & McGuire, P. M. (2010). Low genetic variation and evidence of limited dispersal in the regionally important Belize manatee. Animal Conservation, 13, 592–602. https://doi.org/10.1111/j.1469-1795.2010.00383.x
Hunter, M. E., Mignucci-Giannoni, A. A., Pause Tucker, K., King, T. L., Bonde, R. K., Gray, B., & McGuire, P. M. (2012). Puerto Rico and Florida manatees represent genetically distinct groups. Conservation Genetics, 13, 1623–1635. https://doi.org/10.1007/s10592-012-0414-2
Machuca-Coronado, O., & Corona, M. F. (2019). El manatí antillano Trichechus manatus manatus (Sirenia-Trichechidae) en Guatemala: amenazas y procesos de conservación. In Kraker C., Calderon A. P., Cabrera A. A. (Eds). Research Perspectives on the Wild Mammals of Guatemala (pp. 188–200). Asociación Guatemalteca de Mastozoólogos.
Marrero, P., Fregel, R., Cabrera, V. M., & Nogales, M. (2009). Extraction of high-quality host DNA from feces and regurgitated seeds: A useful tool for vertebrate ecological studies. Biological Research, 42, 147–151. http://dx.doi.org/10.4067/S0716-97602009000200002
Muschett, G., Bonacic, C., & Vianna, J. A. (2009). A noninvasive sampling method for genetic analyses of the West Indian manatee (Trichechus manatus). Marine Mammals Science, 25, 955–963. https://doi.org/10.1111/j.1748-7692.2009.00310.x
Nourisson, C., Morales-Vela, B., Padilla-Saldívar, J., Tucker, K. P., Clark, A., Olivera-Gomez, L. D., Bonde, R., & McGuire, P. (2011). Evidence of two genetic clusters of manatees with low genetic diversity in Mexico and implications for their conservation. Genetica,139, 833–842. https://doi.org/10.1007/s10709-011-9583-z
Quintana-Rizzo, E., & Reynolds III, J. E. (2010). Regional Management Plan for the West Indian manatee (Trichechus manatus) [Technical Report No. 48]. United Nations Environmental Program (CEP) and Caribbean Environment Programme.
Satizábal, P., Mignucci-Giannoni, A. A., Duchêne, S., Caicedo-Herrera, D., Perea-Sicchar, C. M., García-Dávila, C. R.Trujillo, F., & Caballero, S. J. (2012). Phylogeography and sex-biased dispersal across riverine manatee populations (Trichechus inunguis and Trichechus manatus) in South America. PLoS one, 7, e52468. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0052468
Self-Sullivan, C., & Mignucci-Giannoni, A. A. (2008). Trichechus manatus ssp. manatus. The IUCN Red List of Threatened Species. https://doi.org/10.2305/IUCN.UK.2008.RLTS.T22105A9359161.en.
Vianna, A. J., Bonde, R. K., Caballero, S., Giraldos, J. P., Lima, R. P., Clark, A., Marmontel, M., Morales-Vela, B., Souzza, M. J., Parr, L., Rodríguez-Lopez, M. A., Mignucci-Giannoni, A. A., Powell, J. A., & Santos, F. R. (2006). Phylogeography, phylogeny and hybridization in trichechid sirenians: implication for manatee conservation. Molecular Ecology, 15, 433–447. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2005.02771.x
Zhang, B. W., Li, M., Ma, L. C., & Wei, F. W. (2006). A widely applicable protocol for DNA isolation from fecal samples. Biochemical Genetics, 44, 503–512. https://doi.org/10.1007/s10528-006-9050-1
Comentarios
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.