Revista de Biología Tropical ISSN Impreso: 0034-7744 ISSN electrónico: 2215-2075

OAI: https://revistas.ucr.ac.cr/index.php/rbt/oai
Estudio de histopatología en Arbacia lixula (Arbaciidae: Arbacioida) y Paracentrotus lividus (Parachinidae: Camarodonta) con síntomas de la enfermedad del erizo desnudo en la Isla de Gran Canaria, España
PDF (English)
HTML (English)
EPUB (English)

Palabras clave

rocky shore; Vibrio; sea urchin mortality; Canary Islands; Webbnesia.
costas rocosas; Vibrio; mortalidad de erizos de mar; Islas Canarias; Webbnesia.

Cómo citar

Núñez-González, R., Caballero, M. J., Padilla, D., Martín Barrasa, J. L., & Castro Hernández, J. J. (2024). Estudio de histopatología en Arbacia lixula (Arbaciidae: Arbacioida) y Paracentrotus lividus (Parachinidae: Camarodonta) con síntomas de la enfermedad del erizo desnudo en la Isla de Gran Canaria, España. Revista De Biología Tropical, 72(S1), e58993. https://doi.org/10.15517/rev.biol.trop.v72iS1.58993

Resumen

Introducción: Las enfermedades en los erizos de mar han sido descritas en muchas localidades alrededor del mundo, y se han asociado con la presencia de infecciones por bacterias, protozoarios, hongos y algas.

Objetivo: Este estudio tuvo como finalidad investigar sobre los agentes patógenos que afectan a las poblaciones de Arbacia lixula y Paracentrotus lividus a lo largo de la costa de la Isla de Gran Canaria (Atlántico Centro-Oriental, España).

Métodos: El muestreo fue llevado a cabo en la playa de San Cristóbal, al noreste de la isla, dónde los organismos fueron capturados entre 1-3 metros de profundidad, durante junio, julio y octubre del año 2022. Se tomaron muestras en la zona interna y externa de la lesión en cada organismo, y se cultivaron en varios medios de cultivo.

Resultados: Fueron identificados ocho agentes patógenos diferentes, incluyendo bacterias y hongos, y siendo Vibrio alginolyticus la bacteria más frecuentemente observada en todas las muestras de erizos enfermos. Además, se observaron protozoarios ciliados dentro de los caparazones, actuando potencialmente como parásitos oportunistas.

Conclusiones: Esta investigación proporciona una perspectiva única sobre la enfermedad del erizo desnudo al identificar un número significativo de patógenos asociados, incluida Candida, que no se había reportado previamente en organismos enfermos. Además, el estudio destaca la presencia de una respuesta inflamatoria en tejidos con colonias bacterianas, lo que ofrece información crucial para comprender esta enfermedad de los erizos de mar.

https://doi.org/10.15517/rev.biol.trop..v72iS1.58993
PDF (English)
HTML (English)
EPUB (English)

Citas

Bauer, J. C., & Young, C. M. (2000). Epidermal lesions and mortality caused by vibriosis in deep-sea Bahamian echinoids: a laboratory study. Diseases of Aquatic Organisms, 39(3), 193–199. https://doi.org/10.3354/dao039193

Becker, P. T., Egea, E., & Eeckhaut, I. (2008). Characterization of the bacterial communities associated with the bald sea urchin disease of the echinoid Paracentrotus lividus. Journal of Invertebrate Pathology, 98(2), 136–147. https://doi.org/10.1016/j.jip.2007.12.002

Bizzini, A., & Greub, G. (2010). Matrix-assisted laser desorption ionization time-offlight mass spectrometry, a revolution in clinical microbial identification. Clinical Microbiology and Infection, 16 (11), 1614–1619. https://doi.org/10.1111/j.1469-0691.2010.03311.x

Clemente, S., Lorenzo-Morales, J., Mendoza, J. C., López, C., Sangil, C., Alves, F., Kaufmann, M., & Hernández, J. C. (2014). Sea urchin Diadema africanum mass mortality in the subtropical eastern Atlantic: role of waterborne bacteria in a warming ocean. Marine Ecology Progress Series, 506, 1–14. https://doi.org/10.3354/meps10829

Croxatto, A., Prod’hom, G., & Greub, G. (2012). Applications of MALDI-TOF mass spectrometry in clinical diagnostic microbiology. FEMS Microbiology Reviews, 36(2), 380–407. https://doi.org/10.1111/j.1574-6976.2011.00298.x

Dabrowa, N., Landau, J. W., Newcomer, V. D., & Plunkett, O. A. (1964). A survey of tide-washed coastal areas of Southern California for fungi potentially pathogenic to man. Mycopathologia, 24(2), 137–50. https://doi.org/10.1007/BF02075556

Dumont, C. P., Himmelman, J. H., & Russell, M. P. (2004). Sea urchin mass mortality associated with algal debris from ice scour. In T. Heinzeller, & J. Nebelsick (Eds.), Echinoderms: München (pp. 177–182). Taylor and Francis Group.

Dyková, I., Lorenzo-Morales, J., Kostka, M., Valladares, B., & Pecková, H. (2011). Neoparamoeba branchiphila infections in moribund sea urchins Diadema aff. antillarum in Tenerife, Canary Islands, Spain. Diseases of Aquatic Organisms, 95(3), 225–231. https://doi.org/10.3354/dao02361

Federico, S., Glaviano, F., Esposito, R., Tentoni, E., Santoro, P., Caramiello, D., Costantini, D., & Zupo, V. (2023). The “Bald Disease” of the sea urchin Paracentrotus lividus: pathogenicity, molecular identification of the causative agent and therapeutic approach. Microorganisms, 11(3), 763. https://doi.org/10.3390/microorganisms11030763

Feehan, C. J., & Scheibling, R. E. (2014). Effects of sea urchin disease on coastal marine ecosystems. Marine Biology, 161, 1467–1485. https://doi.org/10.1007/s00227-014-2452-4

Francis-Floyd, R. (2020). Diagnostic methods for the comprehensive health assessment of the long-spined Sea urchin, Diadema antillarum [series of the Veterinary Medicine—Large Animal Clinical Sciences Department, UF/IFAS Extension, VM244]. Ask IFAS. https://edis.ifas.ufl.edu/publication/VM244

Garrabou, J., Gómez-Gras, D., Medrano, A., Cerrano, C., Ponti, M., Schlegel, R., Bensoussan, N., Turicchia, E., Sini, M., Gerovasileiou, V., Teixido, N., Mirasole, A., Tamburello, L., Cebrian, E., Rilov, G., Ledoux, J.B., Souissi, J. B., Khamassi, F., Ghanem, R., ... Harmelin, J. G. (2022). Marine heatwaves drive recurrent mass mortalities in the Mediterranean Sea. Global Change Biology, 28(19), 5708–5725. https://doi.org/10.1111/gcb.16301

Girard, D., Clemente, S., Toledo-Guedes, K., Brito, A., & Hernández, J. C. (2011). A mass mortality of subtropical intertidal populations of the sea urchin Paracentrotus lividus: analysis of potential links with environmental conditions. Marine Ecology, 33(3), 377–385. https://doi.org/10.1111/j.1439-0485.2011.00491.x

Gizzi, F., Jiménez, J., Schäfer, S., Castro, N., Costa, S., Lourenço, S., Canning-Clode, J., & Monteiro, J. (2020). Before and after a disease outbreak: tracking a keystone species recovery from a mass mortality event. Marine Environmental Research, 156, 104905. https://doi.org/10.1016/j.marenvres.2020.104905

Grech, D., Guala, I., & Farina, S. (2019). Sibling bald sea urchin disease affecting the edible Paracentrotus lividus (Echinodermata: Echinoidea) in Sardinia, Italy. PeerJ PrePrints, 7, e27644v2. https://doi.org/10.7287/peerj.preprints.27644v2

Grech, D., Mandas, D., Farina, S., Guala, I., Brundu, R., Cristo, B., Panzalis, P., Salati, F., & Carella, F. (2022). Vibrio splendidus clade associated with a disease affecting Paracentrotus lividus (Lamarck, 1816) in Sardinia (Western Mediterranean). Journal of Invertebrate Pathology, 192, 107783. https://doi.org/10.1016/j.jip.2022.107783

Hernández, J. C., Sangil, C., & Lorenzo-Morales, J. (2020). Uncommon southwest swells trigger sea urchin disease outbreaks in Eastern Atlantic archipelagos. Ecology and Evolution, 10(15), 7963–7970. https://doi.org/10.1002/ece3.6260

Hewson, I., Ritchie, I. T., Evans, J. S., Altera, A., Behringer, D., Bowman, E., Brandt, M., Budd, K. A., Camacho, R. A., Cornwell, T. O., Countway, P. D., Croquer, A., Delgado, G. A., Derito, C., Duermit-Moreau, E., Francis-Floyd, R., Gittens, S., Henderson, L., Hylkema, A., … Breitbart, M. (2023). A scuticociliate causes mass mortality of Diadema antillarum in the Caribbean Sea. Science Advances, 9(16), eadg3200. https://doi.org/10.1126/sciadv.adg3200

Hughes, T. P., Keller, B. D., Jackson, J. B. C., & Boyle, M. J. (1985). Mass mortality of the echinoid Diadema antillarum Philippi in Jamaica. Bulletin of Marine Science, 36(2), 377–384.

Jangoux, M. (1987). Diseases of Echinodermata. 1. Agents microorganisms and protistans. Diseases of Aquatic Organisms, 2(2), 147–162.

Jones, G. M., Hebda, A. J., Scheibling, R. E., & Miller, R. J. (1985). Histopathology of the disease causing mass mortality of sea urchins (Strongylocentrotus droebachiensis) in Nova Scotia. Journal of invertebrate pathology, 45(3), 260–271. https://doi.org/10.1016/0022-2011(85)90102-8

Lessios, H. A. (1988). Population dynamics of Diadema antillarum (Echinodermata: Echinoidea) following mass mortality in Panama. Marine Biology, 99, 515–526. https://doi.org/10.1007/BF00392559

Maes, P., & Jangoux, M. (1984). The bald-sea-urchin disease: a biopathological approach. Helgoländer Meeresuntersuchungen, 37, 217–224. https://doi.org/10.1007/BF01989306

Ministerio de Transporte, Movilidad y Agenda Urbana- Puertos del Estado. (2022, September 19). ‘La temperatura del Mediterráneo superó los 31 ºC este verano’. Puertos del Estado. https://www.puertos.es/es-es/Paginas/Noticias/TemperaturaMarVerano19092022.aspx#

Mira-Gutiérrez, J., & García-Martos, P. (1998). Vibrios de origen marino en patología humana. Revista AquaTIC, 2, 1–10.

Miyamoto, Y., Nakamuma, K., & Takizawa, K. (1961). Pathogenic halophiles. Proposals of a new genus” Oceanomonas” and of the amended species names. Japanese Journal of Microbiology, 5(4), 477–481. https://doi.org/10.1111/j.1348-0421.1961.tb00225.x

QGIS.org. (2023). QGIS Geographic Information System [Computer software]. QGIS Association. http://www.qgis.org

R Core Team. (2023). R: A language and environment for statistical computing [Computer software]. R Foundation for Statistical Computing. https://www.R-project.org/

Salazar-Forero, C. E., Reyes-Batlle, M., González-Delgado, S., Lorenzo-Morales, J., & Hernández, J. C. (2022). Influence of winter storms on the sea urchin pathogen assemblages. Frontiers in Marine Science, 9, 812931. https://doi.org/10.3389/fmars.2022.812931

Sangil, C., & Hernández, J. C. (2022). Recurrent large-scale sea urchin mass mortality and the establishment of a long-lasting alternative macroalgae-dominated community state. Limnology and Oceanography, 67(S1), S430–S443. https://doi.org/10.1002/lno.11966

Scheibling, R. E., & Lauzon-Guay, J. S. (2010). Killer storms: North Atlantic hurricanes and disease outbreaks in sea urchins. Limnology and Oceanography, 55(6), 2331–2338. https://doi:10.4319/lo.2010.55.6.2331

Shaw, C. G., Pavloudi, C., Hudgell, M. A. B., Crow, R. S., Saw, J. H., Pyron, R. A., & Smith, L. C. (2023). Bald sea urchin disease shifts the surface microbiome on purple sea urchins in an aquarium. Pathogens and Disease, 81, ftad025. https://doi.org/10.1093/femspd/ftad025

Shaw, C. G., Pavloudi, C., Crow, R. S., Saw, J. H., & Smith, L. C. (2024). Spotting disease disrupts the microbiome of infected purple sea urchins, Strongylocentrotus purpuratus. BMC Microbiology, 24(1), 11. https://doi.org/10.1186/s12866-023-03161-9

Shimizu, M., Takaya, Y., Ohsaki, S., & Kawamata, K. (1995). Gross and histopathological signs of the spotting disease in the sea urchin Strongylocentrotus intermedius. Fisheries Science, 61(4), 608–613. https://doi.org/10.2331/fishsci.61.608

Siller-Ruiz, M., Hernández-Egido, S., Sánchez-Juanes, F., González-Buitrago, J. M., & Muñoz-Bellido, J. L. (2017). Métodos rápidos de identificación de bacterias y hongos. Espectrometría de Masas MALDI-TOF, medios cromogénicos. Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica, 35(5), 303–313. https://doi.org/10.1016/j.eimc.2016.12.010

Sweet, M. (2020). Sea urchin diseases: effects from individuals to ecosystems. In J. M. Lawrence (Ed.), Developments in Aquaculture and Fisheries Science (Vol. 43, 4th ed., pp. 219–226). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-819570-3.00012-3

Virwani, A., Rajeev, S., Carmichael-Branford, G., Freeman, M. A., & Dennis, M. M. (2021). Gross and microscopic pathology of West Indian sea eggs (Tripneustes ventricosus). Journal of Invertebrate Pathology, 179, 107526. https://doi.org/10.1016/j.jip.2020.107526

Wang, Y. N., Chang, Y. Q., & Lawrence, J. M. (2013). Disease in sea urchins. In J. M. Lawrence (Ed.), Developments in Aquaculture and Fisheries Science (Vol. 38, pp. 179–186). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-396491-5.00012-5

Wang, Y., Feng, N., Li, Q., Ding, J., Zhan, Y., & Chang, Y. (2013). Isolation and characterization of bacteria associated with a syndrome disease of sea urchin Strongylocentrotus intermedius in North China. Aquaculture Research, 44(5), 691–700. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2011.03073.x

Wang, Y., Wang, Q., Chen, L., Ding, R., Peng, Z., & Li, B. (2023). Pathogenicity and immune response of the sea urchin Mesocentrotus nudus to Vibrio coralliilyticus infection. Aquaculture, 572, 739570. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2023.739570

Wickham, H. (2016). ggplot2: Elegant graphics for data analysis (2nd ed). Springer-Verlag. https://doi.org/10.1007/978-3-319-24277-4

Zirler, R., Schmidt, L. M., Roth, L., Corsini-Foka, M., Kalaentzis, K., Kondylatos, G., Mavrouleas, D., Bardanis, E., & Bronstein, O. (2023). Mass mortality of the invasive alien echinoid Diadema setosum (Echinoidea: Diadematidae) in the Mediterranean Sea. Royal Society Open Science, 10(5), 230251. https://doi.org/10.1098/rsos.230251

Comentarios

Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.