Efecto de diferentes medios y sustratos en el enraizamiento y adaptación de rosa transgénica

Autores/as

  • Adrián Héctor Palacios-Arriaga Centro de Investigación y Asistencia en Tecnología y Diseño del Estado de Jalisco, A.C. Av. Normalistas #800, Colinas de la Normal, Guadalajara, Jalisco, México. Autor/a
  • Nutan Prasad Rout Centro de Investigación y Asistencia en Tecnología y Diseño del Estado de Jalisco, A.C. Av. Normalistas #800, Colinas de la Normal, Guadalajara, Jalisco, México. Autor/a https://orcid.org/0000-0002-0271-853X

DOI:

https://doi.org/10.15517/am.v30i1.29541

Palabras clave:

Rosa hybrida, medio de cultivo, cultivo sin tierra, aclimatación

Resumen

Introducción. El cultivo in vitro permite el mejoramiento de Rosa hybrida, no obstante, la sobrevivencia de plántulas es difícil durante la aclimatación en sustrato sólido, el proceso conlleva a que las plantas presenten malfuncionamiento de los estomas y por ende, baja asimilación del dióxido de carbono. Objetivo. El objetivo de esta investigación fue evaluar tres medios de enraizamiento in vitro y diferentes sustratos para la aclimatación ex vitro mediante medios sólidos y líquidos de la rosa transgénica. Materiales y métodos. Se utilizaron plantas de rosa (Rosa hybrida L.) cv. Classy transgénica, a partir de embriones somáticos, cultivadas in vitro durante dos años y se sometieron a enraizamiento in vitro y ex vitro, seguido de aclimatación. Para enraizar in vitro tres medios diferentes y para los experimentos ex vitro, se utilizaron siete combinaciones diferentes de sustratos. El estudio se llevó a cabo de agosto de 2012 a enero de 2013 en el Centro de Investigación y Asistencia de Tecnología y Diseño del Estado de Jalisco, A.C. Resultados. Los resultados de los experimentos in vitro y ex vitro demostraron que los mejores resultados se obtuvieron en el medio MS adicionado con sacarosa (30 g/l) y carbón activado (0,5 g/l), y el sustrato compuesto de turba de musgo (70%) y perlita (30%), con 20% de enraizamiento. El sustrato con 25% de humus produjo el mayor contenido de clorofila, sin embargo, no hubo enraizamiento. Los tratamientos con sustrato sólido mostraron mayor porcentaje de sobrevivencia de plántulas, alto promedio de hojas por planta, alto contenido de clorofila y buena calidad del brote en comparación con los hidropónicos. La sobrevivencia en estos últimos fue de 40% sin aireación y 0% con aireación a los dieciséis días de establecimiento; ambos tratamientos no presentaron enraizamiento. Tratamientos sin aireación no mostraron enraizamiento. Conclusión. Mayores contenidos de materia orgánica en sustrato y la presencia de aireación en una solución hidropónica pueden no garantizar una mayor sobrevivencia durante la aclimatación. Los resultados suponen una optimización en la aclimatación de las plantas y el cultivo hidropónico de rosa.  

Descargas

Los datos de descarga aún no están disponibles.

Referencias

Abdolmohammadi, M., M.J. Kermani, H. Zakizadeh, and Y. Hamidoghli. 2014. In vitro embryo germination and interploidy hybridization of rose (Rosa sp). Euphytica 198:255-264. DOI: https://doi.org/10.1007/s10681-014-1098-0

Amancio, S., J.P. Rebordao, and M.M. Chaves. 1999. Improvement of acclimatization of micropropagated grapevine: photosynthetic competence and carbon allocation. Plant Cell, Tiss. Organ Cult. 58:31-37. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1006323129593

Ambros, E.V., O.Y. Vasilyeva, and T.I. Novikova. 2016. Effects of in vitro propagation on ontogeny of Rosa canina L. micropropagated plants as a promising rootstock for ornamental roses. Plant Cell Biotechnol. Mol. Biol. 17:72-78.

Arnold, N.P., M.R. Binns, D.C. Cloutier, N.N. Barthakur, and R. Pellerin. 1995. Auxins, salts concentrations, and their interactions during in vitro rooting of winter-hardy and hybrid tea roses. HortScience 30:1436-1440. DOI: https://doi.org/10.21273/HORTSCI.30.7.1436

Baig, M.M.Q., I.A. Hafiz, A. Hussain, T. Ahmad, and N.A. Abbasi. 2011. An efficient protocol for in vitro propagation of Rosa gruss an teplitz and Rosa centifolia. Afr. J. Biotechnol. 10:4564-4573. d

Barber, J. 1994. Molecular basis of the vulnerability of photosystem II to light. Aust. J. Plant Physiol. 22:201-208. DOI: https://doi.org/10.1071/PP9950201

Benson, E.E. 2000. Special Symposium: In vitro plant recalcitrance do free radicals have a role in plant tissue culture recalcitrance. In vitro Cell. Dev. Biol. Plant 36:163-170. DOI: https://doi.org/10.1007/s11627-000-0032-4

Cárdenas-Navarro, R., y L. López-Pérez. 2011. Propagación vegetativa de rosa: efecto del sustrato, luminosidad y permanencia de la hoja. Sci. Agropecu. 2:203-211. DOI: https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2011.04.02

Das, P. 2010. Mass cloning of rose and mussaenda, popular garden plants, via somatic embryogenesis. Hort. Sci. 37:70-78. DOI: https://doi.org/10.17221/57/2009-HORTSCI

Dastyaran, M. 2015. Effect of humic acid and exogenous putrescine on vase life and leaf macro elements status of hydroponic cultured rose (Rosa hybrid cv. “Dolce vita”). Agric. Commun. 3(1):43-49.

Davoudi, M., L. Samiei, A. Tehranifar, and M. Shoor. 2015. The effect of medium and plant growth regulators on micropropagation of Dog rose (Rosa canina L.). J. Plant Mol. Breed. 3:61-71.

Dere, S., T. Günes, and R. Sivaci. 1998. Spectrophotometric determination of Chlorophyll- A, B and total carotenoid contents of some alga especies using different solvents. Tr. J. Bot. 22:13-17.

Díaz, L.P., L.F. Medina, J. Latife, P.A. Digonzelli, y S.B. Sosa. 2004. Aclimatación de plantas micropropagadas de caña de azúcar utilizando el humus de lombriz. RIA 33:115-128.

Domínguez-Serrano, D., R. García-Velasco, M.E. Mora-Herrera, M. L. Salgado-Siclan, y J.G. González-Díaz. 2016. La cenicilla del rosal (Podosphaera pannosa). Agrociencia 50:901-917.

Hoagland, D.R., and D.I. Arnon. 1950. The water-culture method for growing plants without soil. Calif. Agric. Exp. Sta. Circ. 347:1-32.

Hoitink, H.A.J., A.G. Stone, and M.E. Grebus. 1996. Suppression of plant disease by compost. In: M. de-Bertoldi, editor, The science of composting. Blackie Academic & Profesional, Londres, GBR. p. 373-381. DOI: https://doi.org/10.1007/978-94-009-1569-5_35

Jabbarzadeh, Z., and M. Khosh-Khui. 2005. Factors effecting tissue culture of Damask rose (Rosa damascene Mill.). Sci. Hort. 105: 475-482. DOI: https://doi.org/10.1016/j.scienta.2005.02.014

Jha, R. 2004. Role of in vitro propagation in the improvement of rose cultivars. Agric. Rev. 25:100-115.

Kamo, K., B. Jones, J. Bolar, and F. Smith. 2005. Regeneration from long-term embrygenic callus of the Rosa hybrid cultivar Kardinal. In vitro Cell. Dev. Biol. Plant 41:32-36. DOI: https://doi.org/10.1079/IVP2004599

Korban, S.S., K. Gasic, and X. Li. 2006. Rose (Rosa hybrida L.). In: K. Wang, editor, Methods in molecular biology, Agrobacterium protocols, 2/3. Humana Press Inc., Totowa, NJ, USA. p. 351-359. DOI: https://doi.org/10.1385/1-59745-131-2:351

Li, X., S.F. Krasnyanski, and S.S. Korban. 2002. Somatic embryogenesis, secondary somatic embryogenesis, and shoot organogenesis in Rosa. J. Plant Physiol. 159:313-319. DOI: https://doi.org/10.1078/0176-1617-00688

Martin, K.P., D. Joseph, J. Madassery, and V.J. Philip. 2003. Direct shoot regenaration from lamina explants of two commercial cut flowers cultivars of Anthurium andraeanum Hort. In vitro Cell. Dev. Biol. Plant 39:500-504. DOI: https://doi.org/10.1079/IVP2003460

Murali, S., D. Sreedhar, and T.S. Lokeswari. 1996. Regeneration through somatic embryogenesis from peatl-derived calli of Rosa hybrid L. cv Arizona (hybrid tea). Euphytica 91:271-275. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00033087

Murashige, T., and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol. Plant 15:473-497. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

Nhut, D.T., N.T. Don, T.T.T. An, T.P.T. Van, N.H. Vun, P.X. Huyen, and D.V. Khiem. 2005. Microponic and hydroponic techniques in disease-free chrysanthemum (Chrysanthemum sp.) production. J. Appl. Hort. 7(2):67-71. DOI: https://doi.org/10.37855/jah.2005.v07i02.18

Ozel, C.A., and O. Arslan. 2006. Efficient micropropagation of English shrub rose Heritage under in vitro conditions. Int. J. Agri. Biol. 8:626-629.

Pati, P.K., S.P. Rath, M. Sharma, A. Sood, and P.S. Ahuja. 2006. In vitro propagation of rose-a review. Biotechnol. Adv. 24:94-114. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2005.07.001

Rajapakse, S., M. Hubbard, J.W. Kelly, A.G. Abbott, and R.E. Ballard. 1992. Identification of rose cultivars by restriction fragment length polymorphism. Sci. Hort. 52:237-245. DOI: https://doi.org/10.1016/0304-4238(92)90024-7

Rani, S., and J.S. Rana. 2010. In vitro propagation of Tylophora indica influence of explanting season, growth regulator synergy, culture passage and planting substrate. J. Am. Sci. 6:385-393.

Rout, G.R., B.K. Debata, and P. Das. 1991. Somatic embryogenesis in callus cultures of Rosa hybrid L. cv. Landora. Plant Cell, Tiss. Organ Cult. 27: 65-69. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00048208

Rout, N.P., S.B. Tripathi, and B.P. Shaw. 1998. Effect of salinity on chlorophyll and proline contents in three aquatic macrophytes. Biol. Plant. 40:453-458. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1001186502386

Salas, J.E., D. Agramonte, F. Jiménez-Terry, M. Pérez, R. Collado, R. Barbón, M. La-O, M. De-Feria, y M. Chávez. 2011. Propagación de plantas de Morus alba var. Criolla con el uso de sistemas de inmersión temporal. Biotecnol. Veg. 11:77-88.

Salekjalali, M., B. Jafari, and A. Tarinejad. 2011. In vitro multiplication of rose (Rosa hybrid cv. Baccara). American-Eurasian J. Agric. Environ. Sci. 11:111-116.

Sallanon, H., M. Berger, C. Genoud, and A. Coudret.1998. Water Stress and photoinhibition in acclimatization of Rosa hybrid plantlets. In vitro Cell. Dev. Biol. Plant 34:169-172. DOI: https://doi.org/10.1007/BF02822783

Schneider, F. 2005. Effect of different cultural conditions on micropropagartion of rose (Rosa sp. L.) and globe artichoke (Cynara scolymus L.). Dr. Diss., Technische Universität Müncehn, GER.

Shaw, B.P. 1995. Changes in the levels of photosynthetic pigments in Phaseolus aurerus Roxb. exposed to Hg and Cd at two stages of development: a comparative study. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 55:574-580. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00196038

Singh, B. 2017. Hydroponic culture as screening technique for abiotic stresses. In: V. Paul et al., editors, Manual of ICAR sponsored training programme for technical staff of ICAR institutes on physiological techniques to analyze the impact of climate change on crop plants. ICAR, New Delhi, IND. p. 115-122.

Thien-Nghia, L., H. Thanh-Tung, N. Phuc-Huy, V. Quoc-Luan, and D. Tan-Nhut. 2017. The effects of silver nanoparticles on growth of Chrysanthemum morifolium Ramat. cv. “Jimba” in different cultural systems. Vietnam J. Sci. Technol. 55:503-514. DOI: https://doi.org/10.15625/2525-2518/55/4/9322

Vainstein, A., and H. Ben-Meir. 1994. DNA fingerprint analysis of roses. J. Am. Soc. Hort. Sci. 119:1099-1103. DOI: https://doi.org/10.21273/JASHS.119.5.1099

Vilchez, J., E. Ramírez, M. Villasmil, N. Albany, S. León de Sierralta, y M. Molina. 2007. Aclimatización de vitroplantas de zábila (Aloe vera L.) Burm. f): efectos del sustrato. Rev. Fac. Agron. (LUZ) 24:57-61.

Wang, S.M., X.C. Piao, S.Y. Park, and M.L. Lian. 2012. Improved micropropagation of Gypsophila paniculata with bioreactor and factors affecting ex vitro rooting in microponic system. In vitro Cell. Dev. Biol. Plant 49: 70-78. DOI: https://doi.org/10.1007/s11627-012-9464-x

Xing, W., M. Bao, H. Qin, and G. Ning. 2009. Micropropagation of Rosa rugosa through axillary shoot proliferation. Acta Biol. Cracov. Bot. 52:69-75. DOI: https://doi.org/10.2478/v10182-010-0025-5

Zakizadeh, H. 2008. Somatic embryogenesis, transformation with PSAG12-IPT gene for leaf senescence retardation, and characterization of SERK genes in miniature potted rose (Rosa hybrid “Linda”). Ph.D. Thesis, University of Copenhagen, DEN.

Zakizadeh, H., T. Debener, S. Sriskandarajah, S. Frello, and M. Serek. 2008. Regeneration of mianiature potted rose (Rosa hybrida L.) via somatic embryogenesis. Europ. J. Hort. Sci. 73:111-117. DOI: https://doi.org/10.1079/ejhs.2008/643742

Publicado

01-01-2019

Número

Sección

Artículos científicos

Categorías

Cómo citar

Palacios-Arriaga, A. H., & Prasad Rout, N. (2019). Efecto de diferentes medios y sustratos en el enraizamiento y adaptación de rosa transgénica. Agronomía Mesoamericana, 30(1), 115-129. https://doi.org/10.15517/am.v30i1.29541