Efecto de adyuvantes, fungicidas, bactericidas e insecticidas en el crecimiento de Bacillus subtilis Bs006
DOI:
https://doi.org/10.15517/4n7yym82Palabras clave:
bioestimulante, compatibilidad con agroquímicos, nivel de compatibilidad, inhibición de crecimientoResumen
Introducción. El bioestimulante Natibac¨® base de la rizobacteria Bacillus subtilis Bs006, desarrollado por Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (AGROSAVIA), ha demostrado un efecto promotor del crecimiento en múltiples sistemas productivos de hortalizas y frutales. Para garantizar la eficacia del bioproducto, es fundamental asegurar su establecimiento en el suelo, donde enfrenta condiciones propias de los agroecosistemas e interactúa con diferentes agroquímicos que pueden afectar la viabilidad del ingrediente activo. Objetivo. Determinar el efecto de diferentes agroquímicos utilizados en cultivos de frutas y hortalizas sobre el crecimiento de Bacillus subtilis Bs006, con el propósito de generar recomendaciones de uso en estrategias de manejo integrado de cultivos hortofrutícolas. Materiales y métodos. El estudio se ejecutó en 2024 en las instalaciones de la Planta Piloto de Bioproductos de AGROSAVIA en Mosquera, Colombia. Se evaluó el efecto in vitro de 57 agroquímicos ampliamente usados en el país sobre el crecimiento de B. subtilis Bs006, analizando fungicidas, bactericidas, insecticidas, fertilizantes y coadyuvantes en tres diferentes dosis. La sensibilidad bacteriana a los agroquímicos se determinó midiendo los halos de inhibición de acuerdo con una escala de compatibilidad. Se realizó un análisis de la varianza para evaluar diferencias entre tratamientos, seguido de una prueba de Tukey para comparaciones múltiples. Resultados. Los fungicidas fluazinam, clorotalonil, triadimenol-tebuconazol y cimoxanilo-propineb, y el insecticida clorpirifos inhibieron entre un 53 % y 88 % el crecimiento de B. subtilis Bs006 en su dosis recomendada. Fungicidas, bactericidas e insecticidas como dimetomorf, carbendazim, flutriafol, Kasugamicina, tiabendazol, validamicina A, clorfenapir, metoxifenozida, lambdacihalotrina , sulfoxaflor, espiromesifeno , entre otros, no inhibieron el crecimiento, al igual que todos los fertilizantes y coadyuvantes evaluados. Conclusiones. The results demonstrate the technical and scientific feasibility of including the biostimulant Natibac¨® integrated crop management schemes together with the agrochemicals that did not affect the growth of B. subtilis Bs006.
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Referencias
Angelini, L. L., dos Santos, R.A.C., Fox, G., Paruthiyil, S., Gozzi, K., Shemesh, M., Chai, Y.(2023). Pulcherrimin protects Bacillus subtilis against oxidative stress during biofilm development. npj Biofilms and Microbiomes, 9, Article 50. https://doi.org/10.1038/s41522-023-00418-z
Ayrapetyan, M., Williams, T. C., & Oliver, J. D. (2015). Bridging the gap between viable but non-culturable and antibiotic persistent bacteria. Trends in Microbiology, 23(1), 7-13. doi.org/10.1016/j.tim.2014.09.004
Beltrán-Acosta, C. R, Zapata-Narváez, Y. A, Millán-Montaño, D. A., & Díaz-García, A. (2023). Efecto de Bacillus amyloliquefaciens y Pseudomonas migulae sobre el crecimiento de plántulas de uchuva (Physalis peruviana L.) en semillero. Agronomía Mesoamericana, 34(1), Article 50669. https://dx.doi.org/10.15517/am.v34i1.50669
Bitton, G., Dutton, R. J., Koopman, B., & Dutka, B. J. (1988). Cell permeability to toxicants: An important parameter in toxicity tests using bacteria. Critical Reviews in Environmental Control, 18(3), 177-188. https://doi.org/10.1080/10643388809388347
Da Cruz Nizer, W. S., Nizer, P. S., Carvalho, K. M., & Yates, E. A. (2024). Oxidative stress responses in biofilms. Advanced Biology, 8(2), Article 2300285. https://doi.org/10.1002/adbi.202300285
Deng, X., Liu, W., Huang, P., Zhang, Y., Zhang, S., Guo, Y., Wu, S., & Jiao, Z. (2025). Effects of Bacillus subtilis N24 combined with liquid water-soluble carbon fertilizer on soil chemical properties and microbial community of fresh maize. BMC Microbiology, 25, Article 205. https://doi.org/10.1186/s12866-025-03928-2
Díaz-García, A., García-Riaño, J., & Zapata-Narvaez, J. (2015). Improvement of sporulation conditions of a new strain of Bacillus amyloliquefaciens in liquid fermentation. Advances in Bioscience and Biotechnology, 6, 302-310. https://doi.org/10.4236/abb.2015.64029
Diomedi, A., Chacón, E., Delpiano, L., Hervé, B., Jemenao, M. I., Medel, M., Quintanilla, M., Riedel, G., Tinoco, J., & Cifuentes, M. (2017). Antisépticos y desinfectantes: apuntando al uso racional. Recomendaciones del Comité Consultivo de Infecciones Asociadas a la Atención de Salud, Sociedad Chilena de Infectología. Revista chilena de infectología, 34(2), 156-174. https://dx.doi.org/10.4067/S0716-10182017000200010
Fenibo, E. O., Ijoma G. N., & Matambo, T. (2021). Biopesticides in sustainable agriculture: a critical sustainable development driver governed by green chemistry principles. Frontiers in Sustainable Food Systems, 5, Article 619058. https://doi.org/10.3389/fsufs.2021.619058
Gamez, R. M., Rodríguez, F., Bernal, J. F., Agarwala, R., Landsman, D., & Mariño-Ramírez, L. (2015). Genome sequence of the banana plant growth-promoting rhizobacterium Bacillus amyloliquefaciens BS006. Genome Announcements, 3(6), Article e01391-15. https://doi.org/10.1128/genomea.01391-15
Koga, Y., Kyuragi, T., Nishihara, M., & Sone, N. (1998). Did archaeal and bacterial cells arise independently from noncellular precursors? A hypothesis stating that the advent of membrane phospholipid with enantiomeric glycerophosphate backbones caused the separation of the two lines of descent. Journal of Molecular Evolution, 46(1), 54-63. https://doi.org/10.1007/pl00006283
Lo, C. C. (2010). Effect of pesticides on soil microbial community. Journal of environmental science and health, 45(5), 348-359. https://doi.org/10.1080/10934520903467873
Magalon, A. & Alberge, F. (2016) Distribution and dynamics of OXPHOS complexes in the bacterial cytoplasmic membrane. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Bioenergetics, 1857(3), 198-213. https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2015.10.015
Mannino, G. A. (2023). A new era of sustainability: plant biostimulants. International Journal Molecular Sciences, 24(22), Article 16329. https://doi.org/10.3390/ijms242216329
Meena, R. S., Kumar, S., Datta, R., Lal, R., Vijayakumar, V., Brtnicky, M., Sharma, M. P., Yadav, G. S., Jhariya, M. K., Jangir, C. K., Pathan, S. I., Dokulilova, T., Pecina, V., & Marfo, T. D. (2020). Impact of agrochemicals on soil microbiota and management: a review. Land, 9(2), Article 34. https://doi.org/10.3390/land9020034
Mitchell, P. (1961). Coupling of phosphorylation to electron and hydrogen transfer by a chemi-osmotic type of mechanism. Nature, 191, 144-148. https://doi.org/10.1038/191144a0
Morawska, L. P. & Kuipers, O. P. (2023) Antibiotic tolerance in environmentally stressed Bacillus subtilis: physical barriers and induction of a viable but nonculturable state. MicroLife, 3, 1-18. https://doi.org/10.1093/femsml/uqac010
Mormak, D. A., & Casida, L. E. (1985). Study of Bacillus subtilis endospores in soil by use of a modified endospore stain. Applied and Environmental Microbiology, 49(6), 1356-1360. https://doi.org/10.1128/aem.49.6.1356-1360.1985
Nagaraju, Y., Triveni, S., Subhash Reddy, R., & Vidyasagar, B. (2017). Screening of potassium releasing rhizospheric isolates for agrochemicals compatibility. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 6(11), 372-378. https://doi.org/10.20546/ijcmas.2017.611.042
Pardo, J. C., & Orbegozo, M. C. (2022). Perspectiva sectorial agroindustria: Bioinsumos: panorama y oportunidades para el agro colombiano. Corficolombiana. Recuperado el 11 de noviembre de 2024, de https://investigaciones.corfi.com/documents/38211/0/2022-08-23%20Perspectiva%20Sectorial%20-%20Agroindustria%20bioinsumos2.pdf/b70b971d-0923-a695-9b37-717ca1298a79
Quintarelli, V., Borgatti, D., Baretta, M., Stazi, S. R., Allevato, E., Pancaldi, S., Baldisserotto, C., Mancinelli, R., Tedeschi, P., Radicetti, E., & Ben Hassine, M. (2024). Microbial biofertilizers and algae-based biostimulant affect fruit yield characteristics of organic processing tomato. Journal of the Science of Food and Agriculture, 105(1), 530-539. https://doi.org/10.1002/jsfa.13851
Ramsden, J. J. (2017). Can bacteria develop resistance to photocatalytically generated reactive oxygen species? Journal of Biological Physics and Chemistry, 17(2), 47-51. https://doi.org/10.4024/06RA17N.jbpc.17.02
Rath, S. & Das, S., (2025). Stress response proteins within biofilm matrixome protect the cell membrane against heavy metals-induced oxidative damage in a marine bacterium Bacillus stercoris GST-03. International Journal of Biological Macromolecules, 293, Article 139397. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2024.139397
Rodríguez-Aristizabal, M. A., & Lugo-Ramírez, M. C. (2023). Estado actual del uso de bioinsumos microbianos en Colombia. Chilean Journal of Agricultural & Animal Sciences, 39(3), 444-456. https://dx.doi.org/10.29393/chjaa39-39eamm20039
Sarkar, A., Ghosh, P. K., Pramanik, K., Mitra, S., Soren, T., Pandey, S., Mondal, M. H., & Maiti, T. K. (2018). A halotolerant Enterobacter sp. displaying ACC deaminase activity promotes rice seedling growth under salt stress. Research in Microbiology, 169(1), 20-32. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2017.08.005
Shahid, M., & Khan, M.S. (2022). Ecotoxicological implications of residual pesticides to beneficial soil bacteria: A review. Pesticide Biochemistry and Physiology, 188, Article 105272. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2022.105272
Shahid, M., Manoharadas, S., Altaf, M., & Alrefaei, A. F. (2021) Organochlorine pesticides negatively influenced the cellular growth, morphostructure, cell viability, and biofilm-formation and phosphate-solubilization activities of Enterobacter cloacae strain EAM 35. ACS Omega, 6(8), 5548-5559. https://doi.org/10.1021/acsomega.0c05931
Sliti, A., Singh, V., Ibal, J. C., Jeong, M. & Shin, J.-H. (2024). Impact of propiconazole fungicide on soil microbiome (bacterial and fungal) diversity, functional profile, and associated dehydrogenase activity. Environmental Science and Pollution Research, 31(5), 8240–8253. https://doi.org/10.1007/s11356-023-31643-w
Song, L., Wang, S., Zou, H., Yi, X., Jia, S., Li, R. & Song J. (2025). Regulation of Ergosterol Biosynthesis in Pathogenic Fungi: Opportunities for Therapeutic Development. Microorganisms, 13(4) Article 862. https://doi.org/ 10.3390/microorganisms13040862.
Steinberg, G., Schuster, M., Gurr, S. J., Schrader, T. A., Schrader, M., Wood, M., Early, A., & Kilaru, S. (2020). A lipophilic cation protects crops against fungal pathogens by multiple modes of action. Nature Communications, 11, Article 1608. https://doi.org/10.1038/s41467-020-14949-y
Uribe Gutiérrez, L. A., Cotes Prado, A. M., Zapata Narváez, J. A., Beltrán Acosta, C. R., Torres Torres, L. A., García Riaño, J. L., Santos Díaz, A. M., & Mejía Maldonado, C. N. (2023). Colección de microorganismos con interés en control biológico - AGROSAVIA. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria. https://doi.org/10.15472/mwpqlq
Yang, C., Hamel, C., Vujanovic, V., & Gan, Y. (2011). Fungicide: modes of action and possible impact on nontarget microorganisms. International Scholarly Research Notices, 2011, 130289. https://doi.org/10.5402/2011/130289
Zapata-Narváez, Y., Díaz-García, A., Beltrán-Acosta, C., Barrios-Candil, S., Gómez-Marroquín, M., & Cortes-Rojas, D. (2024). Bacillus subtilis Bs006 formulations: storage stability, biological activity and endophytism in vegetables. Chilean Journal of Agricultural & Animal Sciences, 40(1), 81-90. https://doi.org/10.29393/CHJAAS40-8BSYD60008
Zhao, X., Zhong, J., Wei, C., Lin, C.W., & Ding, T. (2017). Current perspectives on viable but non-culturable state in foodborne pathogens. Frontiers in Microbiology, 8, Article 580. https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.00580
Zwick, J. V., Noble, S., Ellaicy, Y. K., Coe, G. D., Hakey, D. J., King, A. N., Sadauskas, A. J., & Faulkner, M. J. (2017). AhpA is a peroxidase expressed during biofilm formation in Bacillus subtilis. MicrobiologyOpen, 6(1), Article e00403. https://doi.org/10.1002/mbo3.403
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